EXAMEN COPROPARASITARIO

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1 EXAMEN COPROPARASITARIO

2 CONCEPTO DE HECES FECALES
Son restos de alimentos no absorbidos por el tubo digestivo así como células del epitelio intestinal descamadas durante el proceso de absorción de nutrientes, microorganismos y otras sustancias no capaces de atravesar el epitelio intestinal.

3 COMPOSICION DE LAS HECES FECALES
Peso: 150 – 250 gramos. Agua: 75% Sólidos: 25% A) Bacterias muertas : 30% B) Grasas: % C) Sustancias inorgánicas: % D) Proteínas: 2-3% E) Otros : 30%

4 CARACTERISTICAS DE LAS HECES FECALES NORMALES
Consistencia: Sólida y moldeada. Color: Marrón, pardo oscuro o claro. Olor: Sui Géneris o fecaloide. Reacción: Alcalina. Fibras musculares, almidón y ácidos grasos : escasos. Grasa neutra, jabones, cristales, células intestinales de descamación, moco (inexistentes)

5 CLASIFICACIÓN DE LAS HECES FECALES
Sólidas. Blandas. Pastosas. Acuosas.

6 Requisitos para la recogida de la muestra fecal (1)
Se usan las heces emitidas espontáneamente o las obtenidas por tacto rectal o rectosigmoidoscopía. No deben estar contaminadas con sangre ni orina. Deben recogerse en un frasco o caja plástica o de cartón, seco y limpio de boca ancha y etiquetado correctamente.

7 Requisitos para la recogida de la muestra fecal (2)
3 días antes y durante el tiempo de recolección de la muestra deben suspenderse alimentos que produzcan abundante residuo no digerible. La muestra recogida debe enviarse al laboratorio preferentemente antes de 1 hora de haberse recogido No deben usarse laxantes solo en caso de constipación muy marcada y serán salinos no oleosos.

8 Requisitos para la recogida de la muestra fecal (3)
El área de trabajo debe estar limpia y los materiales contaminados deben colocarse en un desinfectante de inmediato. Usar guantes y bata o protector.

9 Muestras inadecuadas para realizar un coproparasitario
Las muestras que se han mantenido más de 1 día a temperatura ambiente. Las obtenidas después de un estudio radiográfico donde se haya usado bario. Las obtenidas después de haber ingerido sustancias como aceite ricino, aceite mineral, bismuto. Las recogidas durante el periodo menstrual.

10 Métodos de conservación de las heces fecales (1)
Refrigeración a 4 grados. Preparaciones selladas en portaobjetos. Formol diluido al 5 o al 10%. Reactivo de MIF ( merthiolate, yodo, formol) Reactivo de alcohol polivinílico (PAV). Reactivo de fenol, alcohol, formol (PAF). Glicerina al 50% Schaudinn.

11 Métodos de conservación de las heces fecales (2)
Reactivo de sodio, ácido acético y formol (SAF). Solución de bicromato de potasio al 2%. No usar preservativos: A) Cuando vamos a identificar parásitos pulmonares. B) Cuando vamos a realizar un cultivo. C) Cuando queremos ver trofozoitos.

12 Examen coproparasitario (1)
Examen macroscópico. Examen microscópico: A) Directo en fresco con suero fisiológico o lugol. B) Métodos de concentración C) Tinciones. D) Cultivos. E) Métodos de recuento de huevos.

13 Examen coproparasitario (2)
Examen químico. Otros estudios: A) Inmunológicos. B) Moleculares.

14 Examen coproparasitario ( 3)
Ventajas; Es específico. Desventajas: A)Pobre sensibilidad. B) Solo permite el diagnóstico de infecciones agudas. C) Necesitan muestras seriadas. D) Son muy laboriosas. E) Requieren especialización técnica.

15 Examen macroscópico (1)
Características organolépticas no patológicas. Consistencia. Forma Aspecto. Color. Cantidad. Olor. Viscosidad.

16 Examen macroscópico (2)
Características organolépticas patológicas. Moco Pus Sangre.

17 Examen microscópico (1)
Directo en fresco con solución salina o con colorantes . Modo de realización. Elementos que pueden observarse en este examen; A) Fibras Vegetales. B) Células vegetales. C) Pelos vegetales.

18 Examen microscópico (2)
D) Almidones. E) Fibras musculares. F) Grasas. G) Cristales. H) Células epiteliales. I) Leucocitos. J) Eritrocitos. K) Levaduras.

19 Métodos de concentración ( 1)
Su finalidad es aumentar el número de parásitos en el volumen de materia fecal. Pueden ser: A) Físicos Sedimentación. Flotación. Centrifugación Centrifugación Flotación.

20 Métodos de concentración (2)
B) Físico Químicos. Derivan del método primitivo de Telemann. C) Biológicos.

21 Métodos de concentración por sedimentación
Ventajas: Pueden usar muestras relativamente grandes. Permite el transporte y almacenamiento de la materia fecal procesada antes de ser examinada. El material empleado es sencillo. Desventajas: Son técnicas de larga ejecución que requieren muchas manipulaciones. Son especialmente útiles en el parasitismo por shistosomas.

22 Métodos de sedimentación (2)
Técnica de Ritchie o centrifugación con formol éter. Técnica de Knott. Método de KOH para Cyclospora.

23 Métodos de flotación Ventajas: Son métodos simples y rápidos.
Permiten procesar varias muestras a la vez. Desventajas: No son útiles para identificar huevos operculados de helmintos ni infértiles de áscaris, ni trofozoitos.

24 Métodos de Flotación (2)
Técnica de Faust o de flotación con sulfato de zinc. Técnica de Sheather. Técnica de Willis Molloy con solución saturada de cloruro de sodio. Técnica de Sheather modificado para ooquistes de Criptosporidium.

25 Métodos de concentración por centrifugación
Se basan en el mismo principio que los métodos de sedimentación por lo tanto las ventajas y desventajas son las mismas. Ejemplos: Técnica de Barody y Most.

26 Métodos de concentración físico químicos
Ventajas; Son sencillos y rápidos de ejecutar. Desventajas: Usan muestras pequeñas y en parasitismos de baja intensidad pueden fallar.

27 Métodos de concentración biológicos
Se basan en la aplicación del ciclo vital de los helmintos y en tropismos particulares de formas juveniles. Técnica de Baermann. Técnica de Harada Mori. Método de agar para Strongiloides.

28 Coloraciones o tinciones
Coloraciones permanentes. Se usan cuando : A) Queremos obtener preparaciones permanentes. B) Queremos distinguir algunas características morfológicas del parásito. C) Es un parásito que solo se observa con tinciones especiales.

29 Coloraciones (2) Coloración de Ziehl Neelsen modificada o de Kinyoun.
Kinyoun modificada. Safranina. Tricrómica o de Gomori Wheatley. Hematoxilina F;errica de Heidenhain. Tricrómica modificada. Azul de metileno. Giemsa.

30 Coloraciones (3) Tinción de Romanosky. Tinción de May Grunwald.
Coloraciones para helmintos: A) Carmín clorhidrico. B) Carmín Bórax. C) Bonilla, Naar, Beloy.

31 Métodos de Cultivos ( 1) Son poco usados en el diagnóstico de las parasitosis intestinales. Métodos de cultivos para Amebas: Medio de Pavlova. Medio de Diamond. Medio de Robinson. Medio polixénico. Medio de Tanabe y Chiba modificado para entamoeba histolítica.

32 Métodos de cultivos (2) Medio de Boeck y Drbohlav modificado.
Medio de Inoki, takada y Nakabayasi. Medio de Robinson. Medios de cultivos para Uncinarias y strongiloides. Técnica de Baermann. Técnica de Hara da Mori. Métodos con arena o carbón vegetal. Placas de agar.

33 Métodos de recuento de huevos
Se usan en las infecciones de helmintos para cuantificar el número de huevos por gramo de heces fecales, se informan h.p.g. Recuento en placa microscópica. Técnica de Stoll Hausheer. Técnica de Kato Katz ( recomendada por la OMS).;

34 Examen químico A) Ph B) Azúcares reductores. C) Sangre oculta.
Normal es ligeramente ácido. B) Azúcares reductores. Las heces fecales son azúcares reductoras negativas. C) Sangre oculta.

35 Técnicas inmunológicas (1)
Detección de coproantígenos parasitarios. Los coproantígenos son productos especifícos de un parásito que se eliminan por las heces y son susceptibles de detectarse por técnicas inmunológicas usando anticuerpos mono o policlonales. Las técnicas más usadas son : ElISA e inmunocromatografía.

36 Técnicas inmunológicas (2)
Ventajas: A) Mayor sensibilidad y especificidad. B) Sirven para hacer estudios de campo. C) Son rápidas. D) No requieren personal experimentado. E) Son fáciles de interpretar. F) Pueden procesar gran número de muestras. G) Diferencian entre infección pasada y reciente.

37 Técnicas inmunológicas (3)
H) Distingue especies isomórficas del mismo género. Desventajas: A) Son muy costosas. B) Necesitan equipos especiales. C) Necesitan usar heces recientes o congeladas. D) Necesitan examinar más de una muestra para llegar a un resultado concluyente.

38 Técnicas inmunológicas (4)
Detección de Anticuerpos. Ventajas: A) Mayor sensibilidad y especificidad. B) Sirven para control de tratamiento, negativización y quimioterapia eficaz. C) Sirven para diferenciar las distintas especies de amebas. D) Pueden procesar gran número de muestras simultáneamente.

39 Falsos negativos del coproparasitario
Muestra inadecuadamente recogida o conservada. Escasez de parásitos en la muestra. Biología del parásito. Período de invasión parasitaria. Períodos negativos.

40 Medidas si coproparasitario es negativo
Usar métodos de concentración. Realizar toma especial de muestra para parásitos de biología peculiar. Repetir 3 veces entre 5 – 7 días. Usar laxantes salinos.

41 Informe del coproparasitario
Se informa por cruces usando el objetivo de 40. 1-15 quistes/trofozoitos >

42 Otras técnicas Además de las heces fecales, existen otras muestras que pueden analizarse para diagnosticar parásitos, ellas son: Sangre Biopsias. Orina Exudado vaginal o uretral. Esputo

43 Otras técnicas (2) f) Aspirado duodenal.
g) Material de la región perianal.