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ESTUDIO DE MATERIA FECAL. Examen Coproparasitoscópico Realiza un examen Coproparasitoscópico (cps), a una muestra de heces con el fin de buscar e identificar.

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1 ESTUDIO DE MATERIA FECAL

2 Examen Coproparasitoscópico Realiza un examen Coproparasitoscópico (cps), a una muestra de heces con el fin de buscar e identificar formas parasitarias.

3 Clasificación Cualitativos que formas parasitarias existen 2 tipos: los métodos de concentración el examen directoEn búsqueda de: trofozoitos, quistes, huevecillos y larvas. Cuantitativos El numero que se encuentran Se utilizan sobre todo en las helmintiasis

4 Indicacion y solicitud PROCEDIMIENTO PARA OBTENER LA MUESTRA preparacion del paciente obtener muestra fecal para el examen EXAMEN COPROLOGICO DIRECTO examen macroscopico directo (heces liquidas,blandas o oscuras ) examen microscopico (leucocitos,eritrocitos,restos de alimentos origen vegetal o animal,levaduras ) CONSERVACION Y ENVIO DE MUESTRAS FECALESrefrigeracion preparacion sellada en porta -objetos reactivo de MIF (merthiolate,iodo,formol) reactivo de PVA (alcohol polivinilico) Explicar los procedimientos de obtención y manejo de materia fecal

5 Conservación y envió de las muestras fecales A)REFRIGERACION ; -el frasco debe colocarse en el refrigerador a 4ºC -Cuando la conservación debe hacerse unas horas o un día -método mas sencillo y practico B) PREPARACIÓN SELLADA EN PORTA OBJETOS -vaselina o barniz de uñas (aplicar en el borde del cubre objetos -Método de doble laminilla ( cubrir la muestra con una laminilla pequeña la cual se aplico bálsamo) C )FORMOL -aplicar en 3g de materia fecal 10 ml de formol diluido 5 a 10 % (utilidad; evita la descomposición, disminuye el olor y fija los parásitos ) D)REACTIVO DE MIF (merthiolate, iodo,formol,) -doble utilidad (fija parásitos y los colorea) -conservación en frasco o en porta objetos (se coloca 1g de heces frescas en un frasco y 10ml de MIF,se mezcla con un aplicador.este puede preservarse por un año. E) REACTIVO DE PVA( ALCOHOL POLIVINILICO) -nombres comerciales ELVANOL o GELVATOL -bueno para preservar trofozoítos y quistes (conservan su morfología por mucho tiempo)

6 EXAMEN MACROSCOPICO 1)CANTIDAD80 a 200g 2) FORMApuroide (cilindrica ) escíbalos(aglomeraciones esfericas) deposición caprina (pequeñas y numerosas) laminada o de cinta 3)CONSISTENCIAduras pastosas fluidas intermedias 4)VISCOSIDADviscosas (pastosas) poco viscosas grasas 5)OLORinodoro(meconio) aumentado(comidas ricas en carne y pescado) debil(dieta vegetariana y lactea) ligeramente agria(niño en pecho) putrido(olor amoniaco, HECES ALCALINAS Y GASES agrio penetrante rancio (heces acidas y gases) Nauseabundo (descomposición de tejido, cáncer ulcerado del recto) 6) RESTOS ALIMENTICIOSrestos vegetales proteicos grasas 7) REACCIONacida(dispepsia de fermentacion, y esprue. Transito rapido cecal) alcalina(insuficiencia gástrica y pancreática y gástrica) 8 )COLORmarron (NORMAL) verde (ingesta de alimentos verduras y medicamentos) rojo ( hemorragias proximal al ano) negro (morcilla,sangre,medicamentos ;carbon,hierro, bismuto) blanco (acolia o hipocolia,seudocolia) amarillo (diarreas de fermentacion hidrocarbonada )

7 EXAMEN MICROSCOPICO SHIGELOSIS 1:LEUCOCITOSPOLIMORFONUCLEARESSALMONELOSIS FIEBRE TIFOIDEA ESCHERICHIA COLI MONONUACLERESFIEBRE TIFOIDEA 2.-ERITROCITOSHEMORRAGIA DE COLON HEMORROIDES SINDROME DISENTERICO 3.-CRISTALES DE CHARCOT-LEYDEN10 A 30 MICRAS DESINTEGRACION DE EOSINOFILOS ASOCIDO A PROCESOS ALERGICOS 4.-RESTOS DE ALIMENTOSALMIDONES CELULAS Y FIBRAS VEGETALES 5.-RESTOS DE ORIGEN ANIMALGRASAS FIBRAS MUSCULARES 6.-FLORA BACTERIANABACILOS CORTOS 7.-ELEMENTOS NO PARASITARIOSGRANULOS DE ALMIDON GOTAS DE ACEITE CELULAS ANIMALES CELULAS VEGETALES POLEN LEVADURAS

8 Métodos de concentración

9 Técnica de Ritchie o centrifugación con formol - éter Concentra quistes de protozoos, huevos y larvas de helmintos Ventajas del uso de eter y formol

10 Técnica de Faust o de flotación con sulfato de zinc Utiliza medio liquido mas pesado que los parásitos Concentra quistes, huevos y larvas Desventaja: poco eficaz para Taenia spp., F. hepatica y óvulos de A. lumricoides

11 Técnica de flotación por Sheather Técnica de Willis - Molloy NaCl Para huevos de uncinaria e Hymenolepsis Separa, concentra y recobra ooquistes de Isospora, Cryptosporidium y Cyclospora. Solución densa de azúcar

12 COPROPARACITOCOPICO Equipo 3

13 Métodos de concentración

14 Técnica de Ritchie o centrifugación con formol - éter Concentra quistes de protozoos, huevos y larvas de helmintos Ventajas del uso de eter y formol

15 Técnica de Faust o de flotación con sulfato de zinc Utiliza medio liquido mas pesado que los parásitos Concentra quistes, huevos y larvas Desventaja: poco eficaz para Taenia spp., F. hepatica y óvulos de A. lumricoides

16 Técnica de flotación por Sheather Técnica de Willis - Molloy NaCl Para huevos de uncinaria e Hymenolepsis Separa, concentra y recobra ooquistes de Isospora, Cryptosporidium y Cyclospora. Solución densa de azúcar

17 COPROPARASITOSCÓPICO Garduño Pérez Isaí Salomón

18 CONSIDERACIONES IMPORTANTES Técnica especifica para cada parásito. Importante proporcionar información acerca del paciente (origen geográfico, signos clínicos esenciales, resultados de otros exámenes y tratamientos recientes). Toma de muestra ideal en laboratorio (protozoarios). Realización sistemática de 3 exámenes de días no consecutivos.

19 EXAMEN PARASITOLÓGICO Anillos de taenias (solium y saginata) Prurito anal y discreta eosinofilia Anquilostosis (Reacción alergíca con exantema, neumonitis, síntomas gastrointestinales, anemia hipocroma microcítica)

20 método del papel de filtro en tubo o de harada-mori Larvas de nemátodos y para embrionar huevos de tremátodos y céstodos 1. Homogeneizar las heces fecales por tamizaje (colador de malla fina). 2. Efectuar siembra de heces sobre la tira de papel filtro 10 cm (2 cm libres). 3. Introducir la tira dentro del tubo, extremo libre sumergido en unos 5 ml de agua. 4. Tapar tubos, colocarlos verticalmente en gradilla e incubar a 20º C.

21 método de agar para strongyloides Strongyloides, Necator americanus y Ancylostoma duodenale 1. Preparar medio, 1.5% agar, 0.5% extracto de carne, 1.0´% peptona y 0.5% NaCl. Autoclave y pasar más de 9 ml del medio a cajas de Petri estériles 2. Dejar secar el medio a temperatura ambiente por 4-5 días. 3. Colocar 2 g de materia fecal en el centro, sellar cajas y dejarlas a temperatura ambiente por 2 días. 4. Observar a simple vista y microscopio estereoscópico con filtro verde.

22 Auxiliares de diagnóstico en el paciente gastroenterológico. COPROGRAMA

23 Estudio de la materia fecal que incluye el estudio microscópico y un análisis bioquímico: – pH. Normal 7.0 Diarrea por bacterias invasivas: <6, acido. Diarrea de origen toxico: neutro Diarreas virales: acido Diarreas por intolerancia a la lactosa: <5, acido – La medida del pH no es valida en pacientes que estén tomando antibióticos orales. – Azucares reductores. Glucosa, lactosa. Detectados con el reactivo Benedict o Clinitest. Diarrea de origen bacteriano toxico: glucosa (+), lactosa (-) Diarreas virales: glucosa (-), lactosa (+) Diarreas inespecíficas: las dos pruebas negativas – Sangre oculta – Prueba para hemoglobina humana

24 METODO DE RECUENTO DE HUEVOS Métodos útiles para saber aproximadamente la intensidad de la infección por ciertos helmintos. – Ascariasis, tricocefalosis, uncinariasis, himenolepiasis y esquistosomiasis. Se basan en la cuantificación del numero de huevos por gramo de materias fecales (h.p.g.) Permiten clasificar en leves, medianas e intensas a las helmintiasis mencionadas.

25 Recuento en placa microscópica Técnica de Kato Katz Técnica de Stoll- Hausheer

26 Strongyloides TECNICA DE CARBON O ARENA Noemí

27 PASOS Mezclar materia fecal con el cultivo – Se agrega agua. – Temperatura: Ambiente – Días: 5-7 A los 3 días se pueden encontrar larvas filariformes de Strongyloides. 6 días: uncinarias

28 COLORACIÓN. Protozoos Intestinales: – Con estos se obtienen detalles morfológicos mas exactos. – Para la docencia – Para archivo – Remitir para confirmación de Dx.

29 TECNICA CON HEMATOXILINA FERRICA DE HEIDENHAIN Protozoos intestinales (amibas) Morfología nuclear REACCIVOS: – Fijador de Scchaudinn – Alcohol iodado – Mordiente – FeNH4(SO4)2-12H2O

30 TECNICA DE COLORACION TRICOMICA. Coloración de los protozoos Citoplasma: Azul verdoso Cuerpos cromatoidales, los eritrocitos y las bacterias: rojo o purpura Fondo: verde. Huevos y larvas: rojo REACTIVOS: – Fijador: Schaudinn oPVA – Colorantes tricomico: 1.Cromotropi 2 R 2.Verde claro 2R 3.Verde brillante FCF 4.Acido fosfotungstico 5.Acido acético glacial 6.Agua destilada 7.Acido acético

31 COLORACION DE ZIEHL – NEELSEN MODIFICADA Para Ooquistes: rojo brillante. Fondo: verde. Son redondeados y ovalados de 3 -5 micras de diámetro, en algunos se logra ver los corpúsculos internos teñidos mas oscuros que corresponden a los esporozoitos. cryptosporidium Cyclospora Isospora

32 Weber Material fecal y aspirado duodenal COLORACION TRICROMICA MODIFICADA PARA MICROSPORIDIOS REACTIVOS : Colorante de comotropo 1.Cromotropo 2R 2.Fast green 3.Acido fosfotungstico 4.Acido acético 5.Alcohol acido


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