Se realizaron 20 ensayos para optimizar la obtención de AZA-MP a escala laboratorio. Los mejores resultados se hallaron empleando EC STD 45 cps, una relación 1:3 fase orgánica:fase acuosa y una concentración de surfactante de 0,2%. En la Tabla 2 se muestran los resultados obtenidos con las condiciones optimizadas con una relación 1:1 AZA:EC sin agregado de estabilizante UV (MP sin HBF) y con agregado de HBF al 5% p/p (MP con HBF). Tabla 2. R%, EE% y Dm de MP sin HBF y MP con HBF Se lograron EE% y R% superiores al 70%. Por lo tanto el compuesto se encuentra mayoritariamente encapsulado luego de la preparación de las MP, consiguiendo disminuir las pérdidas de activo debidas al proceso de obtención. INTRODUCCIÓN Los mosquitos son insectos de gran interés en salud pública ya que muchas especies son vectores de enfermedades. En particular, la especie Aedes aegypti es el vector primario del dengue, la más importante de las infecciones humanas por arbovirus. La tendencia para el control de vectores es la aplicación de biopesticidas específicos, generalmente derivados de productos naturales. Entre ellos, la azadiractina (AZA), que se extrae del árbol de Neem, ha sido reportada como eficaz para mosquitos y también para unas 200 especies de plagas de interés agrícola. La AZA es prácticamente inocua para vertebrados incluyendo los seres humanos. Sin embargo, su uso se ve limitado por su baja estabilidad en soluciones acuosas y su susceptibilidad a la fotodegradación. MATERIALES Y MÉTODOS Las AZA-MP se obtuvieron usando etilcelulosa (EC), un polímero biocompatible que se comercializa en el país y el fotoestabilizante 2,4-dihidroxibenzofenona (HBF). Las partículas se prepararon por una técnica de emulsión-evaporación de solvente. Se optimizaron los siguientes parámetros de formulación; Tabla 1. Parámetros fijos y variables para la optimización de la obtención de AZA-MP. Las variables de respuesta fueron el rendimiento (R%), la eficiencia de encapsulación (EE%), el diámetro medio (D m ) determinado por difracción láser (LS) y la morfología evaluada por microscopía de barrido electrónico (SEM). El contenido de activo y la eficiencia de encapsulación se determinó por cromatografía líquida de alta performance acoplada a espectrometría de masa (HPLC-MS), operando en el modo “single ion recording (SIR)” y seleccionando el ión [M+H-H 2 O] + a 703 m/z. Se evaluó la estabilidad de las MP frente a la irradiación de luz UV en el tiempo. Las AZA-MP se depositaron sobre placas de vidrio en un ambiente regulado a 20ºC y una Humedad relativa del 35%. Las muestras se irradiaron con una lámpara UV ( λ = 254nm ) a una distancia de 10 cm y se tomaron placas a diferentes tiempos. El activo remanente se extrajo y se analizó a través del método de HPLC-MS mencionado anteriormente. El test de letalidad aguda se realizó utilizando hembras Aedes aegypti según métodos estándar. MICROENCAPSULACIÓN DEL BIOPESTICIDA AZADIRACTINA PARA EL CONTROL DE VECTORES DE ENFERMEDADES J. Arata 1, C. Checura 1, M. Santos 1, L. Hermida 1, J. García 2, A.C. Gutiérrez 2 1 INTI Química, 2 Centro de Estudios Parasitológicos y de Vectores (CEPAVE), CONICET Ensayo R%EE%D m (µm) MP sin HBF78 ± 385 ± 42,3 ± 0,9 MP con HBF 73 ± 4 80 ± 5 5 ± 1 1. Objetivo del Proyecto 2. Descripción del Proyecto 3. Logros y resultados del Proyecto Figura 2. Estudio de la estabilidad en el tiempo de: 1) MP sin HBF y 2) MP con HBF. El objetivo de este trabajo fue optimizar la obtención de micropartículas de azadiractina para proteger al compuesto de las condiciones ambientales adversas. Se caracterizaron las formulaciones seleccionadas y se evaluó su estabilidad frente a la fotodegradación y su eficacia frente a mosquitos Aedes aegypti. Además, se desarrolló un método cromatográfico que permitió la determinación del contenido de activo en las micropartículas. Las imágenes SEM de las MP revelaron su esfericidad y superficie lisa, prácticamente sin aglomerados visibles (Fig.1), confirmando lo observado previamente por microscopía óptica. Una menor concentración de EC y HBF se tradujo en distribuciones de tamaño más homogéneas, llegando a ser monomodales y de D m más pequeños. Debe notarse que en este tipo de productos suelen buscarse distribuciones homogéneas, con un tamaño inferior a los 10 µm, lo cual favorece su aplicación y estabilidad en suspensión. Las formulaciones seleccionadas resultaron igual de eficaces como insecticidas que el activo sin encapsular (100% de mortalidad a las 24hs) con un elevado poder de volteo, por lo que la microencapsulación no alteró la eficacia del biocida. El estudio de fotodegradación (Fig.2) reflejó la mejora que se logra al incluir un fotoestabilizante en la formulación de MP aumentando el tiempo de vida del activo. Pasadas 24 hs, el contenido de AZA en las MP con HBF se redujo un 46% mientras que en las MP sin HBF se redujo un 77%. Figura 1. Imágenes SEM y distribuciones de tamaño de partícula de 1) MP sin HBF y 2) MP con HBF. 2 Parámetros FijosParámetros Variables Solvente: CH 2 Cl 2 % Sólidos: 5% p/p Homogenización alto cizallamiento, 4500 rpm, 5 min. Mw de EC Concentración de Surfactante Relación AZA/EC Relación Fase Orgánica/Fase Acuosa Concentración de HBF 1