Examen Coproparasitoscópico María del Mar Rojas Paredes Kelly Daniela Amaya Suarez Carlos Arturo Sánchez Reyes Erika Johana Moreno Pabon Carlos Nicolas Aleman Gualdròn Guillermo Alexander Ciendua Laura Stephany Lopez Niño

Realiza un examen Coproparasitoscópico (cps), a una muestra de heces con el fin de buscar e identificar formas parasitarias. Generalidades Las muestras fecales son seriadas con un mínimo de tres y deben colocarse en frascos de boca ancha, guardados en lugares frescos, mientras se analizan, pues con el calor se aceleran los fenómenos de degradación por bacterias y con el frío se pueden destruir los quistes y trofozoítos de protozoos Los métodos químicos permiten la conservación durante un tiempo más prolongado, sin correr el riesgo de que los parásitos se deformen o se destruyan, por ejemplo con soluciones que contienen formol, yodo- mertiolate, etc

CLASIFICACIÓN ClasificaciónCualitativos que formas parasitarias existen 2 tipos: los métodos de concentración el examen directoEn búsqueda de: trofozoitos, quistes, huevecillos y larvas. Cuantitativos El numero que se encuentran Se utilizan sobre todo en las helmintiasis

Indicacion y solicitud PROCEDIMIENTO PARA OBTENER LA MUESTRA preparacion del paciente obtener muestra fecal para el examen EXAMEN COPROLOGICO DIRECTO examen macroscopico directo (heces liquidas,blandas o oscuras ) examen microscopico (leucocitos,eritrocitos,restos de alimentos origen vegetal o animal,levaduras ) CONSERVACION Y ENVIO DE MUESTRAS FECALESRefrigeracion preparacion sellada en porta -objetos reactivo de MIF (merthiolate,iodo,formol) reactivo de PVA (alcohol polivinilico) Procedimientos de obtención y manejo de materia fecal

Conservación y envió de las muestras fecales A)REFRIGERACION ; -el frasco debe colocarse en el refrigerador a 4ºC -Cuando la conservación debe hacerse unas horas o un día -método mas sencillo y practico B) PREPARACIÓN SELLADA EN PORTA OBJETOS -vaselina o barniz de uñas (aplicar en el borde del cubre objetos -Método de doble laminilla ( cubrir la muestra con una laminilla pequeña la cual se aplico bálsamo) C )FORMOL -aplicar en 3g de materia fecal 10 ml de formol diluido 5 a 10 % (utilidad; evita la descomposición, disminuye el olor y fija los parásitos ) D)REACTIVO DE MIF (merthiolate, iodo,formol,) -doble utilidad (fija parásitos y los colorea) -conservación en frasco o en porta objetos (se coloca 1g de heces frescas en un frasco y 10ml de MIF,se mezcla con un aplicador.este puede preservarse por un año. E) REACTIVO DE PVA( ALCOHOL POLIVINILICO) -nombres comerciales ELVANOL o GELVATOL -bueno para preservar trofozoítos y quistes (conservan su morfología por mucho tiempo)

EXAMEN MACROSCOPICO 1)CANTIDAD80 a 200g 2) FORMApuroide (cilindrica ) escíbalos(aglomeraciones esfericas) deposición caprina (pequeñas y numerosas) laminada o de cinta 3)CONSISTENCIAduras pastosas fluidas intermedias 4)VISCOSIDADviscosas (pastosas) poco viscosas grasas 5)OLORinodoro(meconio) aumentado(comidas ricas en carne y pescado) debil(dieta vegetariana y lactea) ligeramente agria(niño en pecho) putrido(olor amoniaco, HECES ALCALINAS Y GASES agrio penetrante rancio (heces acidas y gases) Nauseabundo (descomposición de tejido, cáncer ulcerado del recto) 6) RESTOS ALIMENTICIOSrestos vegetales proteicos grasas 7) REACCIONacida(dispepsia de fermentacion, y esprue. Transito rapido cecal) alcalina(insuficiencia gástrica y pancreática y gástrica) 8 )COLORmarron (NORMAL) verde (ingesta de alimentos verduras y medicamentos) rojo ( hemorragias proximal al ano) negro (morcilla,sangre,medicamentos ;carbon,hierro, bismuto) blanco (acolia o hipocolia,seudocolia) amarillo (diarreas de fermentacion hidrocarbonada )

EXAMEN MICROSCOPICO SHIGELOSIS 1:LEUCOCITOSPOLIMORFONUCLEARESSALMONELOSIS FIEBRE TIFOIDEA ESCHERICHIA COLI MONONUACLERESFIEBRE TIFOIDEA 2.-ERITROCITOSHEMORRAGIA DE COLON HEMORROIDES SINDROME DISENTERICO 3.-CRISTALES DE CHARCOT-LEYDEN10 A 30 MICRAS DESINTEGRACION DE EOSINOFILOS ASOCIDO A PROCESOS ALERGICOS 4.-RESTOS DE ALIMENTOSALMIDONES CELULAS Y FIBRAS VEGETALES 5.-RESTOS DE ORIGEN ANIMALGRASAS FIBRAS MUSCULARES 6.-FLORA BACTERIANABACILOS CORTOS 7.-ELEMENTOS NO PARASITARIOSGRANULOS DE ALMIDON GOTAS DE ACEITE CELULAS ANIMALES CELULAS VEGETALES POLEN LEVADURAS

Métodos de concentración

Técnica de Ritchie o centrifugación con formol - éter  Concentra quistes de protozoos, huevos y larvas de helmintos  Ventajas del uso de eter y formol

Técnica de Faust o de flotación con sulfato de zinc  Utiliza medio liquido mas pesado que los parásitos  Concentra quistes, huevos y larvas  Desventaja: poco eficaz para Taenia spp., F. hepatica y óvulos de A. lumricoides

Técnica de flotación por Sheather Técnica de Willis - Molloy  NaCl  Para huevos de uncinaria e Hymenolepsis Separa, concentra y recobra ooquistes de Isospora, Cryptosporidium y Cyclospora. Solución densa de azúcar

Técnica de Ritchie o centrifugación con formol - éter Concentra quistes de protozoos, huevos y larvas de helmintos Ventajas del uso de eter y formol

Técnica de Faust o de flotación con sulfato de zinc Utiliza medio liquido mas pesado que los parásitos Concentra quistes, huevos y larvas Desventaja: poco eficaz para Taenia spp., F. hepatica y óvulos de A. lumricoides

COPROGRAMA Estudio de la materia fecal que incluye el estudio microscópico y un análisis bioquímico: –pH. Normal 7.0 Diarrea por bacterias invasivas: <6, acido. Diarrea de origen toxico: neutro Diarreas virales: acido Diarreas por intolerancia a la lactosa: <5, acido –La medida del pH no es valida en pacientes que estén tomando antibióticos orales. –Azucares reductores. Glucosa, lactosa. Detectados con el reactivo Benedict o Clinitest. Diarrea de origen bacteriano toxico: glucosa (+), lactosa (-) Diarreas virales: glucosa (-), lactosa (+) Diarreas inespecíficas: las dos pruebas negativas –Sangre oculta –Prueba para hemoglobina humana

METODO DE RECUENTO DE HUEVOS Métodos útiles para saber aproximadamente la intensidad de la infección por ciertos helmintos. – Ascariasis, tricocefalosis, uncinariasis, himenolepiasis y esquistosomiasis. Se basan en la cuantificación del numero de huevos por gramo de materias fecales (h.p.g.) Permiten clasificar en leves, medianas e intensas a las helmintiasis mencionadas.

Recuento en placa microscópica Técnica de Kato Katz Técnica de Stoll- Hausheer

COLORACIÓN. Protozoos Intestinales: – Con estos se obtienen detalles morfológicos mas exactos. – Para la docencia – Para archivo – Remitir para confirmación de Dx.

TECNICA CON HEMATOXILINA FERRICA DE HEIDENHAIN Protozoos intestinales (amibas) Morfología nuclear REACCIVOS: – Fijador de Scchaudinn – Alcohol iodado – Mordiente – FeNH4(SO4)2-12H2O

TECNICA DE COLORACION TRICOMICA. Coloración de los protozoos  Citoplasma: Azul verdoso  Cuerpos cromatoidales, los eritrocitos y las bacterias: rojo o purpura  Fondo: verde.  Huevos y larvas: rojo REACTIVOS: – Fijador: Schaudinn oPVA – Colorantes tricomico: 1.Cromotropi 2 R 2.Verde claro 2R 3.Verde brillante FCF 4.Acido fosfotungstico 5.Acido acético glacial 6.Agua destilada 7.Acido acético REACTIVOS: – Fijador: Schaudinn oPVA – Colorantes tricomico: 1.Cromotropi 2 R 2.Verde claro 2R 3.Verde brillante FCF 4.Acido fosfotungstico 5.Acido acético glacial 6.Agua destilada 7.Acido acético

COLORACION DE ZIEHL – NEELSEN MODIFICADA Para Ooquistes: rojo brillante. Fondo: verde. Son redondeados y ovalados de 3 -5 micras de diámetro, en algunos se logra ver los corpúsculos internos teñidos mas oscuros que corresponden a los esporozoitos. cryptosporidium Cyclospora Isospora

Weber Material fecal y aspirado duodenal COLORACION TRICROMICA MODIFICADA PARA MICROSPORIDIOS REACTIVOS : Colorante de comotropo 1.Cromotropo 2R 2.Fast green 3.Acido fosfotungstico 4.Acido acético 5.Alcohol acido

Gracias