ESTUDIO DE MATERIA FECAL

Presentación del tema: "ESTUDIO DE MATERIA FECAL"— Transcripción de la presentación:

1 ESTUDIO DE MATERIA FECAL

2 Examen Coproparasitoscópico
Realiza un examen Coproparasitoscópico (cps), a una muestra de heces con el fin de buscar e identificar formas parasitarias.

3 Clasificación Clasificación Cualitativos
que formas parasitarias existen 2 tipos: los métodos de concentración el examen directo En búsqueda de: trofozoitos, quistes, huevecillos y larvas. Cuantitativos El numero que se encuentran Se utilizan sobre todo en las helmintiasis

4 Explicar los procedimientos de obtención y manejo de materia fecal
Indicacion y solicitud PROCEDIMIENTO PARA OBTENER LA MUESTRA preparacion del paciente obtener muestra fecal para el examen CONSERVACION Y ENVIO DE MUESTRAS FECALES refrigeracion preparacion sellada en porta -objetos reactivo de MIF (merthiolate,iodo,formol) reactivo de PVA (alcohol polivinilico) EXAMEN COPROLOGICO DIRECTO examen macroscopico directo (heces liquidas ,blandas o oscuras ) examen microscopico (leucocitos,eritrocitos,restos de alimentos origen vegetal o animal ,levaduras )

5 Conservación y envió de las muestras fecales
REFRIGERACION ; -el frasco debe colocarse en el refrigerador a 4ºC -Cuando la conservación debe hacerse unas horas o un día -método mas sencillo y practico B) PREPARACIÓN SELLADA EN PORTA OBJETOS -vaselina o barniz de uñas (aplicar en el borde del cubre objetos -Método de doble laminilla ( cubrir la muestra con una laminilla pequeña la cual se aplico bálsamo) C )FORMOL -aplicar en 3g de materia fecal 10 ml de formol diluido 5 a 10 % (utilidad; evita la descomposición , disminuye el olor y fija los parásitos ) D)REACTIVO DE MIF (merthiolate, iodo,formol,) -doble utilidad (fija parásitos y los colorea) -conservación en frasco o en porta objetos (se coloca 1g de heces frescas en un frasco y 10ml de MIF ,se mezcla con un aplicador .este puede preservarse por un año . E) REACTIVO DE PVA( ALCOHOL POLIVINILICO) -nombres comerciales ELVANOL o GELVATOL -bueno para preservar trofozoítos y quistes (conservan su morfología por mucho tiempo)

6 EXAMEN MACROSCOPICO 1)CANTIDAD 80 a 200g 2) FORMA
puroide (cilindrica ) escíbalos(aglomeraciones esfericas) deposición caprina (pequeñas y numerosas) laminada o de cinta 3)CONSISTENCIA duras pastosas fluidas intermedias 4)VISCOSIDAD viscosas (pastosas) poco viscosas grasas 5)OLOR inodoro (meconio) aumentado (comidas ricas en carne y pescado) debil (dieta vegetariana y lactea) ligeramente agria (niño en pecho) putrido (olor amoniaco, HECES ALCALINAS Y GASES agrio penetrante rancio (heces acidas y gases) Nauseabundo (descomposición de tejido, cáncer ulcerado del recto) 6) RESTOS ALIMENTICIOS restos vegetales proteicos 7) REACCION acida (dispepsia de fermentacion, y esprue. Transito rapido cecal) alcalina (insuficiencia gástrica y pancreática y gástrica) 8 )COLOR marron (NORMAL) verde (ingesta de alimentos verduras y medicamentos) rojo ( hemorragias proximal al ano) negro (morcilla,sangre,medicamentos ;carbon ,hierro , bismuto) blanco (acolia o hipocolia,seudocolia) amarillo (diarreas de fermentacion hidrocarbonada )

7 EXAMEN MICROSCOPICO SHIGELOSIS 1:LEUCOCITOS POLIMORFONUCLEARES
SALMONELOSIS FIEBRE TIFOIDEA ESCHERICHIA COLI MONONUACLERES 2.-ERITROCITOS HEMORRAGIA DE COLON HEMORROIDES SINDROME DISENTERICO 3.-CRISTALES DE CHARCOT-LEYDEN 10 A 30 MICRAS DESINTEGRACION DE EOSINOFILOS ASOCIDO A PROCESOS ALERGICOS 4.-RESTOS DE ALIMENTOS ALMIDONES CELULAS Y FIBRAS VEGETALES 5.-RESTOS DE ORIGEN ANIMAL GRASAS FIBRAS MUSCULARES 6.-FLORA BACTERIANA BACILOS CORTOS 7.-ELEMENTOS NO PARASITARIOS GRANULOS DE ALMIDON GOTAS DE ACEITE CELULAS ANIMALES CELULAS VEGETALES POLEN LEVADURAS

8 Métodos de concentración

9 Técnica de Ritchie o centrifugación con formol - éter
Concentra quistes de protozoos, huevos y larvas de helmintos Ventajas del uso de eter y formol

10 Técnica de Faust o de flotación con sulfato de zinc
Utiliza medio liquido mas pesado que los parásitos Concentra quistes, huevos y larvas Desventaja: poco eficaz para Taenia spp., F. hepatica y óvulos de A. lumricoides

11 Técnica de flotación por Sheather Técnica de Willis - Molloy
Separa, concentra y recobra ooquistes de Isospora, Cryptosporidium y Cyclospora. Solución densa de azúcar NaCl Para huevos de uncinaria e Hymenolepsis

12 Equipo 3 COPROPARACITOCOPICO

13 Métodos de concentración

14 Técnica de Ritchie o centrifugación con formol - éter
Concentra quistes de protozoos, huevos y larvas de helmintos Ventajas del uso de eter y formol

15 Técnica de Faust o de flotación con sulfato de zinc
Utiliza medio liquido mas pesado que los parásitos Concentra quistes, huevos y larvas Desventaja: poco eficaz para Taenia spp., F. hepatica y óvulos de A. lumricoides

16 Técnica de flotación por Sheather Técnica de Willis - Molloy
Separa, concentra y recobra ooquistes de Isospora, Cryptosporidium y Cyclospora. Solución densa de azúcar NaCl Para huevos de uncinaria e Hymenolepsis

17 COPROPARASITOSCÓPICO
Garduño Pérez Isaí Salomón

18 CONSIDERACIONES IMPORTANTES
Técnica especifica para cada parásito. Importante proporcionar información acerca del paciente (origen geográfico, signos clínicos esenciales, resultados de otros exámenes y tratamientos recientes). Toma de muestra ideal en laboratorio (protozoarios). Realización sistemática de 3 exámenes de días no consecutivos.

19 EXAMEN PARASITOLÓGICO
Anillos de taenias (solium y saginata) Prurito anal y discreta eosinofilia Anquilostosis (Reacción alergíca con exantema, neumonitis, síntomas gastrointestinales, anemia hipocroma microcítica)

20 método del papel de filtro en tubo o de harada-mori
Larvas de nemátodos y para embrionar huevos de tremátodos y céstodos 1. Homogeneizar las heces fecales por tamizaje (colador de malla fina). 3. Introducir la tira dentro del tubo, extremo libre sumergido en unos 5 ml de agua. 4. Tapar tubos, colocarlos verticalmente en gradilla e incubar a 20º C. 2. Efectuar siembra de heces sobre la tira de papel filtro 10 cm (2 cm libres).

21 método de agar para strongyloides
Strongyloides, Necator americanus y Ancylostoma duodenale 1. Preparar medio, 1.5% agar, 0.5% extracto de carne, 1.0´% peptona y 0.5% NaCl. Autoclave y pasar más de 9 ml del medio a cajas de Petri estériles 3. Colocar 2 g de materia fecal en el centro, sellar cajas y dejarlas a temperatura ambiente por 2 días. 4. Observar a simple vista y microscopio estereoscópico con filtro verde. 2. Dejar secar el medio a temperatura ambiente por 4-5 días.

22 Auxiliares de diagnóstico en el paciente gastroenterológico.
COPROGRAMA

23 COPROGRAMA Estudio de la materia fecal que incluye el estudio microscópico y un análisis bioquímico: pH. Normal 7.0 Diarrea por bacterias invasivas: <6, acido. Diarrea de origen toxico: neutro Diarreas virales: acido Diarreas por intolerancia a la lactosa: <5, acido La medida del pH no es valida en pacientes que estén tomando antibióticos orales. Azucares reductores. Glucosa, lactosa. Detectados con el reactivo Benedict o Clinitest. Diarrea de origen bacteriano toxico: glucosa (+), lactosa (-) Diarreas virales: glucosa (-), lactosa (+) Diarreas inespecíficas: las dos pruebas negativas Sangre oculta Prueba para hemoglobina humana

24 METODO DE RECUENTO DE HUEVOS
Métodos útiles para saber aproximadamente la intensidad de la infección por ciertos helmintos. Ascariasis, tricocefalosis, uncinariasis, himenolepiasis y esquistosomiasis. Se basan en la cuantificación del numero de huevos por gramo de materias fecales (h.p.g.) Permiten clasificar en leves, medianas e intensas a las helmintiasis mencionadas.

25 Recuento en placa microscópica
Técnica de Kato Katz Técnica de Stoll- Hausheer

26 TECNICA DE CARBON O ARENA
Strongyloides TECNICA DE CARBON O ARENA RUTH NOEMI BLANCAS LAZARO Noemí

27 PASOS Mezclar materia fecal con el cultivo
Se agrega agua. Temperatura: Ambiente Días: 5-7 A los 3 días se pueden encontrar larvas filariformes de Strongyloides. 6 días: uncinarias

28 COLORACIÓN. Protozoos Intestinales:
Con estos se obtienen detalles morfológicos mas exactos. Para la docencia Para archivo Remitir para confirmación de Dx.

29 TECNICA CON HEMATOXILINA FERRICA DE HEIDENHAIN
Protozoos intestinales (amibas) Morfología nuclear REACCIVOS: Fijador de Scchaudinn Alcohol iodado Mordiente FeNH4(SO4)2-12H2O COLORANTE:

30 TECNICA DE COLORACION TRICOMICA.
Coloración de los protozoos Citoplasma: Azul verdoso Cuerpos cromatoidales, los eritrocitos y las bacterias: rojo o purpura Fondo: verde. Huevos y larvas: rojo REACTIVOS: Fijador: Schaudinn oPVA Colorantes tricomico: Cromotropi 2 R Verde claro 2R Verde brillante FCF Acido fosfotungstico Acido acético glacial Agua destilada Acido acético TECNICA DE COLORACION TRICOMICA. El huso es como la antrior pero es mas rapida REACTIVOS: Fijador: Schaudinn oPVA Colorantes tricomico: Cromotropi 2 R Verde claro 2R Verde brillante FCF Acido fosfotungstico Acido acetico glacial Agua destilada Acido acetico El citoplasma de los protozoos se obsera azul verdoso con tintes púrpura, los quistes de E.coli puede ser mas rojizos. Cromtina , los cuerpos cromatoidales, los eritrocitos y las bacterias, se ven de color jojo o purpura El fondo de la preparacion es verde. Los huevos y larvas se tiñen de rojo

31 COLORACION DE ZIEHL – NEELSEN MODIFICADA
Para cryptosporidium Cyclospora Isospora Ooquistes: rojo brillante. Fondo: verde. Son redondeados y ovalados de 3 -5 micras de diámetro , en algunos se logra ver los corpúsculos internos teñidos mas oscuros que corresponden a los esporozoitos.

32 COLORACION TRICROMICA MODIFICADA PARA MICROSPORIDIOS
REACTIVOS : Weber Material fecal y aspirado duodenal Colorante de comotropo Cromotropo 2R Fast green Acido fosfotungstico Acido acético Alcohol acido