MANEJO DE CATÉTERES INTRAVASCULARES

Presentación del tema: "MANEJO DE CATÉTERES INTRAVASCULARES"— Transcripción de la presentación:

1 MANEJO DE CATÉTERES INTRAVASCULARES
Lic. Mariana Dabosio Lic. Cecilia Muñiz Lic. Silvia Ferreyra Programa de educación continua. Departamento de enfermería. AMSJ junio de 2008.

2 OBJETIVOS Mantener un buen funcionamiento los catéteres intravasculares. Reducir las complicaciones. Mejorar la calidad de los cuidados de enfermería.

3 CLASIFICACIÓN Catéteres cortos periféricos: Catéteres centrales:
Mariposa De teflón. Catéteres centrales: Sistema con reservorio (Port-A- Cath) Catéteres tunelizados (Hickman) Seldinger

4 VENOCLISIS Definición
   Es un procedimiento invasivo consiste en la canalización de una vena con una cánula corta de teflón o mariposa para acceder al árbol vascular del paciente, con la finalidad de poder aplicar un tratamiento endovenoso poco agresivo y de corta duración.

5 MATERIALES Bandeja conteniendo: 1 par de guantes.
Jeringa estéril con suero fis. Clorhexidina alcohólica. Gasa doblada estéril. Catéter adecuado. Cinta para fijación y apósito transparente. Riñón descartable. Ligadura. Llave de 3 vías. Silla.

6 PROCEDIMIENTO Lavado de manos. Preparar la bandeja.
Explicar procedimiento al usuario. Ligue y valore ambos MMSS en búsqueda de la vena más adecuada mediante la observación y palpación.

7 PROCEDIMIENTO Cont.

8 PROCEDIMIENTO Cont. Seleccione el catéter más adecuado teniendo en cuenta: Tamaño y estado de las venas del usuario. Propósito de la vía. Tipo de líquido a infundir. Duración de la terapia. Estado del paciente.

9 PROCEDIMIENTO Cont. A modo de ejemplo:
DE PREFERENCIA SIEMPRE ESCOGER EL CATÉTER DE MENOR CALIBRE POSIBLE PARA PROPORCIONAR LA TERAPIA I/V DESEADA. A modo de ejemplo: Nº 24: usuarios pediátricos y neonatos, usuarios sometidos a quimioterapia o con venas muy pequeñas y/o frágiles Nº 22: Medicación a largo plazo , terapia con soluciones isotónicas; usuarios pediátricos o adultos con venas pequeñas. Nº 20: Usuarios que reciben grandes volúmenes de líquidos, adm. de sangre o líquidos viscosos, adm. de contrastes i/v. Nº 18: Usuarios sometidos a cirugía, para adm. de sangre o grandes volúmenes de líquidos.

10 PROCEDIMIENTO Cont. NUNCA PUNCIONAR: Un miembro que presente una FAV.
Un miembro al que se le ha practicado un vaciamiento ganglionar (Ej. Mastectomia). Un miembro plégico. Por debajo de una zona de edema o flebitis.

11 PROCEDIMIENTO Cont. Una vez escogida la vena a puncionar y el catéter adecuado, colóquese los guantes y realice asepsia de la zona con clorhexidina alcohólica en forma circular desde adentro hacia fuera. Siéntese el tiempo que se emplea en asegurar la máxima dilatación de las venas de todo el antebrazo y el dorso de la mano en busca de una buena vena es tiempo bien empleado.

12 CARACTRÍSTICAS DE LOS PRINCIPALES ANTISEPTICOS
ANTISÉPTICO ESPECTRO DE ACCIÓN INICIO DE LA ACTIVIDAD EFECTO RESIDUAL Alcohol al 70% Bacterias Gram + Gram – Citomegalovirus 2 minutos Nulo Corhexidina Gram – (psedudomona) Hongos Virus 15 – 30 segundos 6 horas Yodofón 3 minutos 3 horas Peróxido de hidrógeno Inmediato

13 PROCEDIMIENTO Cont. Puncione: Traccione la piel hacia atrás.
Coloque el bisel del catéter hacia arriba sobre la vena. Inserte el catéter con un ángulo de 15º para venas superficiales y de 25º a 30º en venas profundas.

14 PROCEDIMIENTO Cont. Inserte el catéter suavemente.
Observe si refluye sangre hacia la cámara. Una vez que obtiene sangre baje el ángulo de la cánula hasta que este al nivel de la piel e introduzca unos 6mm luego comience a retirar el mandril a la vez que sigue introduciendo el teflón en la vena. Retire el torniquete y el mandril totalmente.

15 PROCEDIMIENTO Cont. Conecte la llave de 3 vías previamente cebada.
Fije el catéter realizando corbata con leuco sobre el cono del mismo o fije en forma de L. Dejando a la vista el punto de inserción. Coloque apósito transparente. Rotule sobre el mismo: calibre del catéter, fecha y hora en que fue colocado y firma.

16 PROCEDIMIENTO Cont.

17 PROCEDIMIENTO Cont. Conecte la jeringa y adm. 5 cc de suero fisiológico. Inyecte suavemente valorando permeabilidad, extravasación del suero, tolerancia del paciente. Dejar el tapón mientras tanto envuelto en gasa estéril con alcohol o en aguja estéril. Desconecte la jeringa y coloque nuevamente el tapón. No es necesario usar dilución de heparina, siempre que realice un buen lavado de la vena con suero fisiológico a presión positiva, que impida el reflujo de sangre hacia el catéter. Dejar gasa doblada debajo del catéter para evitar lesiones de piel, cubra con la misma la llave de 3 vías y coloque malla.

18 PROCEDIMIENTO Cont. Acondicione al usuario.
Descarte el material usado en los recipientes correspondieres Lévese las manos Registre en historia clínica el procedimiento realizado, fecha y hora, calibre de catéter usado y firma.

19 MANEJO DE CCH Realizar desinfección de mesada y bandeja.
LOS CUIDADOS DE ENFERMERÍA INICIAN DESDE EL MOMENTO DE LA PREPARACIÓN DE LA MEDICACIÓN O SOLUCIONES PARENTERALES A ADMINISTRAR. Realizar desinfección de mesada y bandeja. NO colocar sanita sobre la bandeja una vez alcoholeada. Lavado de manos. Si usa infusores no retirarlos de su envase estéril hasta el momento de conectarlos al sachet de suero. Previo al corte del pico del suero a usar realizar: Desinfección con alcohol al 70% o alcohol iodado Desinfección de la tijera con la que realizo el procedimiento.

20 MANEJO DE CCH Cont. Previa manipulación de CCH lavado de manos
Previa administración de medicación realizar valoración de vena y miembro en que se encuentra el CCH, punto de inserción y fijación del mismo. Coloque el tapón sobre gasa estéril o en aguja estéril. Previa administración de medicación, lavar vena con suero fisiológico, valorando permeabilidad.

21 MANEJO DE CCH Cont. Registre en historia clínica:
Una vez administrada la medicación nuevamente realizar lavado de vena con suero fisiológico. Proteja el CCH con gasa estéril y malla. Acondicione al usuario. Registre en historia clínica: Hora. Valoración realizada. Medicación administrada. Tolerancia del paciente. Firma clara.

22 COMPLICACIONES Factores que causan complicaciones: Infusión.
Duración del catéter. Irritación mecánica y/o química. Contaminación.

23 COMPLICACIONES Cont. Las más frecuentes son:
Extravasación: Salida del líquido perfundido hacia los tejidos periféricos de la vena canalizada. Flebitis mecánica o química: Reacción del tejido venoso a una lesión, irritación o colonización bacteriana. Infección en el sitio de inserción.

24 PREVENCIÓN DE COMPLICACINES
Como prevenirlas: Lavado de manos. Extravasación o infiltración: USAR UN CATÉTER DE CALIBRE ADECUADO A LA VENA A PUNCIONAR. Mantener valoración continua del sitio de punción y del miembro para detectar precozmente complicaciones. Valorar miembro en busca de edema, frialdad, perdida de fluido por reborde y palidez cutánea. Mantener una correcta fijación que impida que el catéter lesione la vena por fricción.

25 PREVENCIÓN DE COMPLICACINES

26 PREVENCIÓN DE COMPLICACINES Cont.
Flebitis: Usar catéter de calibre adecuado. Valoración continua del punto de inserción de catéter, vena y miembro en que se encuentra. Escala de Maddox para valorar flebitis: Indica 0: Sin dolor en la zona de punción. Indica 1: Zona de punción sensible. Indica 2: Zona de punción sensible, con cierto eritema y/o cierto grado de edema. Indica 3: Zona de punción dolorosa, con eritema y edema, con tumefacción, cordón venoso palpable. Indica 4: Zona de punción dolorosa, con eritema y edema, con tumefacción, con cordón venoso palpable y con purulencia. Indica 5: Trombosis venosa franca con todos los signos del Índice 4, con dificultad o detención de la perfusión.

27 PREVENCIÓN DE COMPLICACINES Cont.
Realizar estricta técnica aséptica durante la colocación del catéter y su manipulación. Fijación correcta del catéter. Lavado de la vena antes y después de administrar medicación. Mantener una velocidad de flujo de las soluciones parenterales adecuada. Curación del punto de inserción .

28 PREVENCIÓN DE COMPLICACINES Cont.
Cambiar fijación siempre que este despegada o manchada con sangre o medicamentos. Dilución adecuada de la medicación a administrar. Cambio de tubuladuras y llaves de 3 vías cada 72 hs.* o siempre que presenten restos de sangre . * Recomendación de CDC, Center for Disease Control and Prevention .

29 PREVENCIÓN DE COMPLICACINES
Infección del sitio de inserción: Las 2 fuentes principales de contaminación son: la flora dérmica. La proveniente de las manos o del equipo en contacto con el catéter i/v.

30 PREVENCIÓN DE COMPLICACINES
Como reducir el riesgo de infección: Preparación adecuada de la zona previo a su punción. Fijación correcta del catéter. El apósito transparente fija mejor la vía permitiendo la valoración del punto de inserción y la zona peri catéter pudiendo permanecer hasta el retiro del catéter sin curación siempre que no aparezcan complicaciones*. * Recomendación de “Colonization and infection associated with Transarent Dressing for Central Venous Catheters – A comparative Trial”

31 PREVENCIÓN DE COMPLICACINES Cont.
Obstrucción: desaparición de la luz del conducto intraluminal del catéter. Como prevenirla: Lavado de la vena con suero fisiológico a presión positiva luego de la administración de medicación. Otras. Estricto lavado de manos en la colocación y manipulación del catéter. Preparar soluciones a administrar en condiciones asépticas.

32 PREVENCIÓN DE COMPLICACIONES
La infusión de sangre o hemoderivados se realizará en un sist. de venoclisis único retirándolo después de su utilización. Realizar cambio de tubuladuras cada 72 Hs.* Cambiar llave de 3 vías cada 72Hs*. o, siempre que este manchada o tenga restos de sangre. Curación del punto de inserción. Cambiar fijación siempre que se manche o despegada. No mantener el catéter si no es necesario *CDC, Center for Disease Control and Prevention

33 EXTRACCIÓN DE MUESTRA PARA HEMOCULTIVO.

34 EXTRACCIÓN DE MUESTRA PARA HEMOCULTIVO
Propósito: extraer sangre en condiciones asépticas que permita la investigación de gérmenes. RRHH: 2 operadores RRMM. Bandeja conteniendo: 2 pares de guantes estériles. Campo fenestrado. Torundas o gasa doblada estéril. Clorhexidina alcohólica. Jeringas y agujas. Ligadura. Tapaboca y gorro. Frascos con medio de cultivo, rotulados. Bolsa de residuos.

35 EXTRACCIÓN DE MUESTRA PARA HEMOCULTIVO Cont.
Procedimiento: Lavado de manos Preparación de bandeja con material necesario Realizar desinfección de ligadura con alcohol al 70%. Valorar los MMSS del usuario para seleccionar una vena periférica que permita la extracción de una sola punción en lo posible. Lavado de manos de ambos operadores.

36 EXTRACCIÓN DE MUESTRA PARA HEMOCULTIVO Cont.
Segundo operador Ligar el miembro a puncionar Primer Operador Colocarse gorro, tapaboca y guantes estériles. Realizar asepsia de la zona seleccionada para puncionar con clorhexidina alcohólica. Extraer 8ml. de sangre en adultos. Cambiar aguja y verter directamente en el frasco preparado con medio de cultivo. Colocar al usuario en posición cómoda Acondicionar bandeja y descartar material usado

37 EXTRACCIÓN DE MUESTRA PARA HEMOCULTIVO Cont.
Rotular el frasco con nombre del usuario, Nº de afiliado, Nº de muestra, hora de realizado. Enviar muestra a laboratorio. OBSERVACIONES: No inyectar sangre con espuma o aire en el medio de cultivo. Agitar suavemente el frasco para evitar que la sangre coagule. Si el usuario está recibiendo antibióticos debe comunicársele al laboratorio.

38 MUCHAS GRACIAS