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TÉCNICAS DE NECROPSIA PATOLOGÍA GENERAL VETERINARIA.

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Presentación del tema: "TÉCNICAS DE NECROPSIA PATOLOGÍA GENERAL VETERINARIA."— Transcripción de la presentación:

1 TÉCNICAS DE NECROPSIA PATOLOGÍA GENERAL VETERINARIA

2 1. Identificación del animal. 2. Examen externo: Aspecto general: Examinar orificios corporales por lesiones o excreciones anormales Piel Condición Física

3 2. Examen externo: Caballo se coloca decúbito lateral derecho. Otros mamíferos decúbito lateral izquierdo. 3. Desprender toda la piel del animal.

4 4. Incisiones para abertura de la cavidad abdominal. Observación de la situación y el contenido de los distintos órganos. Se corta la pared abdominal en la parte más dorsal de la última costilla o cerca de la apófisis xifoide del esternón.

5 4. Se continúa el corte con dirección dorsal posterior hasta la sínfisis púbica. 5. Evisceración de órganos. Se deben abrir los órganos y observar la mucosa y tipo de contenido.

6 6. Incisiones para abertura de la cavidad torácica con observación de las relaciones y el contenido de los distintos órganos. Se corta desde la parte más dorsal de la última costilla hasta la primera costilla.

7 6. Ventralmente se cortan las uniones costo-condrales y se retira todo el flanco costal derecho. Desprender lengua, tráquea, esófago y vísceras torácicas.

8 6. Cortar inserciones mandibulares de la lengua, desarticular el hueso hioides, halar lengua posteriormente cortando las inserciones del cuello y torácica, extrayendo finalmente todo el conjunto de vísceras.

9 7. Evisceración de órganos de la cavidad torácica junto con el cuello. 8. Examen de los órganos de la cavidad abdominal y torácica. 9. Abertura de la cavidad craneal, examen del encéfalo, ojos y oídos.

10 10. Abertura y examen del canal raquídeo. Muestras para histopatología se deben fijar en formol al 10% por 24 horas (1 parte de formol por 9 partes de agua destilada)

11 Muestras para bacteriología deben ser tomadas asépticamente. El material debe ser estéril o desinfectarlo al momento de tomar la muestra. Usar bolsas plásticas y refrigerar.

12 TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS

13 Muestras para virología no es necesario que sean tomadas asépticamente. Usar bolsas plásticas y congelar. VIROLOGÍA

14 Deben ser colocadas en bolsas de papel o frascos. Refrigerar o congelar. Muestras de parásitos, hacer raspado profundo de piel o tomar parásitos enteros y guardar en bolsas o frascos. TOXICOLOGÍA

15 SANGRE Refrigerada, debe llegar al laboratorio antes de las 24 horas tras su extracción. Proteger los tubos frente a los golpes. Para cultivo de linfocitos (viremias, TBC), sólo Heparina.

16 SANGRE Para hemoparásitos cualquier anticoagulante o directamente frotis fino de sangre sobre portaobjetos de vidrio.

17 SUERO No precisa refrigeración. Nunca congelar los sueros con coágulo. Se puede congelar el suero limpio tras retirar el coágulo. Proteger los tubos frente a los golpes.

18 En tubos sin anticoagulante. Para maximizar el volumen de suero, dejar el tubo inclinado o invertido a temperatura ambiente unos 30 minutos.

19 HECES Para análisis coprológico. No precisa refrigeración. No congelar. Emplear un recipiente hermético. Recoger directamente del recto con guante o bolsa de plástico.

20 HECES Para cultivos bacteriológicos. Refrigeradas, no congeladas y mínimo tiempo de transporte. Recoger directamente del recto con guante o bolsa de plástico.

21 RASPADOS CUTÁNEOS: Limpiar y desinfectar la piel. Raspar suavemente con hoja estéril de bisturí los bordes del área afectada tomando pelo y piel y profundizando hasta que sangre.

22 RASPADOS CUTÁNEOS: No precisan refrigeración. Se envían en frascos estériles. ORINA En frasco hermético y estéril, refrigerada nunca congelada.

23 LCR ó SINOVIAL Tomar muestra con una jeringa estéril. Procurar asepsia óptima, desinfectar punto de inyección y evitar contaminación con sangre. Refrigerar y en tubos con anticoagulante.

24 LECHE No precisan refrigeración si se ha tomado correctamente. Tubo estéril de boca estrecha (5mm). Limpiar y desinfectar el pezón, desechar primeros chorros. Llenar el tubo o frasco estéril.

25 MATERIAL BÁSICO

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31 CORTE INICIAL EN ZONA MANDIBULAR

32 DESOLLAMIENTO TOTAL

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37 Examinar 7 tejidos: Tej. Subcutáneo Tej. Muscular Tej. Óseo Médula Ósea Tej. Linfático Articulaciones Sangre

38 POSICIÓN DE ÓRGANOS

39 APERTURA CAVIDAD ABDOMINAL

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42 EXAMEN DE POSICIÓN DE ÓRGANOS ABDOMINALES

43 EXAMEN DE CAVIDAD ABDOMINAL

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46 APERTURA CAVIDAD ABDOMINAL

47 APERTURA CAVIDAD TORÁCCICA

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53 POSICIÓN DE LOS ÓRGANOS EN CAVIDAD TORÁCCICA

54 EXTRACCIÓN APARATO RESPIRATORIO

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56 EXTRACCIÓN DE LENGUA

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64 EXAMEN DE ESÓFAGO

65 EXAMEN DE TRÁQUEA

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70 EXAMEN DE PULMONES

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74 EXAMEN DE BRONQUIOS

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77 EXAMEN DE BRONQUÍOLOS

78 EXAMEN DE CORAZÓN

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83 EXAMEN DEL CORAZÓN

84 APERTURA DEL CORAZÓN

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86 EXAMEN AURÍCULAS

87 EXAMEN VENTRÍCULOS

88 EXAMEN AURÍCULAS Y VENTRÍCULOS

89 EXAMEN VENTRÍCULOS

90 EXAMEN VENTRÍCULO IZQUIERDO

91 EXAMEN VENTRÍCULOS

92 EXAMEN INTERNO DEL CORAZÓN

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97 POSICIÓN DEL RIÑÓN

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100 EXTRACCIÓN DEL RIÑÓN

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105 OBSERVACIÓN DEL RIÑÓN

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109 APERTURA CAVIDAD PÉLVICA

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111 EXTRACCIÓN ÓRGANOS

112 EXAMEN ÓRGANOS DIGESTIVOS

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114 EXAMEN INTESTINOS

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117 EXTRACCIÓN INTESTINOS

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119 EXAMEN RUMEN

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121 MUCOSA RUMINAL

122 EXAMEN RETÍCULO

123 MUCOSA RETÍCULO

124 EXAMEN OMASO

125 MUCOSA OMASO

126 EXAMEN ABOMASO

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128 MUCOSA ABOMASO

129 EXAMEN DE INTESTINOS

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133 EXAMEN DE PLACAS DE PEYER

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135 EXAMEN DE HÍGADO

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138 EXAMEN DE VESÍCULA BILIAR

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143 VIABILIDAD CONDUCTO BILIAR

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146 CORTE DE CABEZA

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162 MUESTRA DE FECAS

163 MUESTRA DE FECAS (BACTERIOLOGÍA)

164 MUESTRA DE FECAS (VIROLOGÍA)

165 MUESTRA DE PULMÓN

166 MUESTRA DE HÍGADO

167 MUESTRA DE INTESTINO

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