Los valores de N-BM encontrados en las tres especies fueron altos, superando el valor medio descrito por Wardle (1992) de 93 mg/ Kg suelo para ecosistemas forestales templados, por lo que no se encontraron diferencias significativas entre especies (Tabla 1). Hay que tener en cuenta que nuestros valores se tomaron en verano, sumado al efecto de heterogeneidad espacial creado por la planta. Bajo las leguminosas se encontró un valor medio de N-mineral hasta 3 veces superior que bajo la no leguminosa E. umbellata, lo que corrobora la importancia de especies fijadoras N 2 en la incorporación de N al ecosistema (Tabla 1, Figura 1). Es posible que la potencia estadística de nuestro test (n=10) fuese insuficiente para detectar diferencias de hasta 0.88 y 0.87 mg Kg -1 día -1 en la tasa de mineralización neta real (Tabla 1). U. gallii se diferenció por presentar los mayores valores de amonificación (Tabla 1, Figuras 5 y 7), coincidiendo con el mayor contenido de materia orgánica en suelo encontrado bajo esta especie en un estudio más amplio realizado sobre esta comunidad. Sin embargo, las tasas de nitrificación fueron muy bajas (Tabla 1, Figuras 6 y 8), sugiriendo la posibilidad de algún mecanismo de inhibición. La menor tasa de nitrificación real bajo E. umbella (Tabla 1, Figura 6) sugiere que la nitrificación podría estar más inhibida bajo esta especie que bajo las leguminosas. La mayor relación C/ N existente en los tejidos de E. umbellata frente a las leguminosas podría favorecer a microorganismos heterótrofos con más requerimientos de C que las bacterias nitrificantes (Tabla 1). Las correlaciones positivas encontradas entre las tasas potenciales y reales (p<0.05) demuestran que el experimento de mineralización en laboratorio proporciona una estima fiable aunque superior del N mineralizado “in situ”. La toma de N fue mayor en las dos leguminosas, encontrando diferencias significativas entre U. gallii y E. Umbellata, lo que demuestra que el alto requerimiento de N de nuestras dos especies leguminosas no se satisface exclusivamente vía fijación atmosférica de N (Tabla 1, Figura 2). El N del tejido fotosintético y radicular de las leguminosas resultó ser entre un 33% y 50% más alto que en la no leguminosa (Figura 2 y 3). Los mayores requerimientos de N por parte de las leguminosas y su capacidad fijadora se tradujeron en mayores cantidades de este nutriente en planta. La facilidad de estas plantas para conseguir N y la probable falta de limitación se reflejaron en el contenido de N en el tejido senescente, muy similar al del tejido fotosintético (Tabla 1). La relación positiva del N-BM con la amonificación y mineralización neta real (p<0.05) refleja el efecto de la biomasa microbiana en la mineralización del N. El N-mineral estuvo positivamente correlacionado con la amonificación (p<0.001), mineralización potencial (p<0.05) y toma de N (p<0.05). Las tasas de mineralización y amonificación tanto potenciales como reales estuvieron positivamente correlacionadas con la toma de N (p<0.05, p<0.01, p<0.001 y p<0.001 respectivamente). La concentración de N-mineral en el suelo se relacionó positivamente con la concentración de N en planta (p<0.001) y la amonificación potencial y nitrificación real con la concentración de N en tejido fotosintético (p<0.01). Todas estas correlaciones demuestran que mayores tasas de mineralización conllevan a mayor disponibilidad de nutrientes y por tanto a mayor toma de N por parte de las plantas, la cual termina traduciéndose en un mayor contenido de N en planta. Estas relaciones ponen además de manifiesto que la concentración de N-mineral edáfica puede ser un buen indicador de la disponibilidad de nutrientes y de la concentración de este nutriente en los tejidos de la planta. 2 o día (B): Rodríguez, A. y Gallardo, A. Departamento de Ecología y Biología Animal. Facultad de Biología. Campus Lagoas-Marcosende Universidad de Vigo INTRODUCCIÓN La fijación biológica de N 2 atmosférico es una ventaja competitiva para las plantas que pueden hacer uso de ella, ya que el N es el nutriente más limitante de la producción primaria neta en ecosistemas terrestres. Los más importantes fijadores de N 2 en ecosistemas terrestres son las simbiosis Rhizobium-leguminosa, componente principal después de un incendio, creándose los típicos tojales, muy presentes en toda Galicia. El principal objetivo de este trabajo es el estudio del impacto que puede llegar a tener la presencia de leguminosas en el ciclo del N. Para ello se realizaron comparaciones de niveles de N-mineral disponible en suelo, N-Biomasa microbiana y ensayos de mineralización y nitrificación tanto en laboratorio como “in situ”. Se estudió si estas posibles diferencias coincidían con diferencias en el contenido de N en tejidos vegetales y se estimó la toma de N por plantas. La hipótesis principal de este trabajo sugiere que la presencia de leguminosas en el matorral atlántico determina diferencias en el ciclo del N, influyendo en las condiciones y regulación de incrementos en la disponibilidad de N en suelo y siendo un factor importante que incrementaría la heterogeneidad espacial del mismo. ÁREA DE ESTUDIO Sierra de “O Galiñeiro”, Pontevedra (42º 08’ 12.6’’N, 8º 41’ 59’’W), altura máxima de 706 m. Suelo entisol, poca profundidad, rocas graníticas y pH 4.5. Dominio climático “Oceánico húmedo”. Tª media anual 12,2 ºC, humedad estándar 65,1 % y precipitación anual 2549,2 l/ m2. RECOGIDA Y ANÁLISIS DE LAS MUESTRAS Julio de 2002, 3 muestras de suelo contiguas (A, B y C) bajo las especies: - Fijadoras de N 2 : Ulex gallii y Genista tridentata - No fijadora de N 2 : Erica umbellata 10 individuos de cada especie30 individuos en total Muestreo realizado en dos días: 1 er día (A): El estudio contó con un total de 90 muestras de suelo y 80 muestras vegetales. Se calculó: - Mineralización neta de N potencial de las muestras A por el método descrito por Allen et al. (1986) y la mineralización real mediante la diferencia de N-mineral entre las muestras B y A. - N-Biomasa microbiana mediante el método de fumigación-extracción descrito por Brookes et al. (1985), seguido de la determinación del N total mediante el método de oxidación con K 2 S 2 O 8 (Cabrera et al. 1993). - La Toma de N-mineral por la planta como la diferencia entre la toma bruta (diferencia de N-mineral entre las muestras B y C) y la inmovilización microbiana de N- mineral (diferencia entre el N-Biomasa microbiana de las muestras C y B). - La concentración de N en las muestras vegetales a partir de una digestión Kjeldahl (Walinga et al.1995). - N-mineral en suelo mediante la extracción de submuestras frescas con KCl 2M, filtrado (filtros Millipore 0.45 µm) y análisis de NH 4 + -N y NO 3 - -N por el método colorimétrico de azul de indofenol con ayuda de microplacas y un lector de microplacas (Sims et al. 1995). - Muestras de tejido radicular obtenidas en el laboratorio a partir de las muestras A. Análisis estadístico RESULTADOS Y DISCUSIÓN Visión parcial de la parcela G. tridentata E. umbellata U. gallii Variables edáficas y vegetales medidas E. umbellata U. gallii G. tridentata pMedia E. E. Media Media N-Biomasa microbiana (mg/ Kg) N. S N-mineral en suelo (mg/ Kg) < a b b 1.51 Nitrificación neta potencial (mg Kg -1 día -1 ) < ab a b Amonificación neta potencial (mg Kg -1 día -1 ) < a b ab Mineralización neta potencial del N (mg Kg -1 día -1 ) N. S Nitrificación neta real (mg Kg -1 día -1 ) < a ab b Amonificación neta real (mg Kg -1 día -1 ) < ab a b Mineralización neta real del N (mg Kg -1 día -1 ) N. S Toma de N por plantas (mg/ Kg) < a b ab 4.48 N en tejido fotosintético (g/ Kg) < a b b 0.36 N en tejido radicular (g/ Kg) < a b b 0.34 N en tejido senescente (g/ Kg) N. S Muestras A Cámara fría (4ºC) hasta procesamiento Muestras B Incubación en campo durante 20 días. Método de la bolsa enterrada para la determinación de N mineralizado “in situ” y la estima de la toma de N por plantas (Eno 1960). Figura 1. Concentración de N-mineral bajo las tres especies Figura 2. Toma de N llevada a cabo por las tres especies Figura 4. Concentración de N en el tejido radicular de las tres especies Figura 3. Concentración de N en el tejido fotosintético de las tres especies Tabla 1. Medias y errores estándar (E. E.) de las variables edáficas y vegetales medidas, además de los resultados de los ANOVA y test de Tuckey, donde letras diferentes indican diferencias significativas. N. S. (No Significativo)= p>0.05 CONCLUSIONES  La presencia de fijadores de N 2 provoca cambios en los contenidos de N-mineral en suelo y tasas de amonificación y nitrificación afectando a la toma y contenido de N en planta.  Nuestros datos corroboran la hipótesis principal demostrando que la presencia de leguminosas en el matorral atlántico determina diferencias en el ciclo del N, provocando heterogeneidad espacial con respecto a la disponibilidad y una aceleración local del ciclo del N en esta comunidad vegetal. DIFERENCIAS EN EL CICLO DEL NITRÓGENO EN UN MATORRAL ATLÁNTICO Parcela: parte alta de la sierra, matorral atlántico con codominancia de dos grupos funcionales diferentes de plantas arbustivas: plantas fijadoras y no fijadoras de N2 atmosférico. Figura 5. Amonificación neta real bajo las tres especies Figura 6. Nitrificación neta real bajo las tres especies Figura 7. Amonificación neta potencial bajo las tres especies Figura 8. Nitrificación neta potencial bajo las tres especies - ANOVA de una vía para la comparación entre especies de las diferentes variables edáficas y vegetales medidas. - Comparaciones entre especies (Test de Tuckey) para ver entre cuales existían diferencias significativas. - Correlaciones de Pearson entre las diferentes variables. - Recogida de muestras A y B. - Recogida de muestras incubadas y muestras C. - Muestras de tejido fotosintético y senescente de la parte aérea de todos los individuos excepto en E. umbellata donde fue imposible la recogida de tejido senescente. U NIVERSIDAD DE V IGO