Ambiente Aviario exterior rodeado con malla con sustrato natural y plantas. Varias especies Africanas Arbóreos Perico psitacula (PP), paloma verde Africana,

Presentación del tema: "Ambiente Aviario exterior rodeado con malla con sustrato natural y plantas. Varias especies Africanas Arbóreos Perico psitacula (PP), paloma verde Africana,"— Transcripción de la presentación:

1 Investigación en una parvada de Agapornis de Fischer (Agapornis fischeri) con daño en el Plumaje.

2 Ambiente Aviario exterior rodeado con malla con sustrato natural y plantas. Varias especies Africanas Arbóreos Perico psitacula (PP), paloma verde Africana, palomas moteada, martín pescador cabeza gris, cigüeña pico zapato, tejedores cabeza negra. En Suelo Zancudo playero, Ganso pigmeo Africano (acuático)

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4 Dieta Concentrado para Psitácidos Semillas Frutas varias y vegetales
Agua ad libitum Tx: Sólo cuando se necesitaba, no en el periodo del caso

5 Primavera 1997 0.0.75 parvada mixta de adultos con alta reproducción
1991: 50% parvada proviene de una misma Institución 1993: 25% parvada proviene de una segunda Institución 1995: 25% parvada proviene de la segunda Institución 1997: “Nuevo” Agapornis enmascardos (Agapornis personata) se encontró en el aviario No estaba en el inventario de la colección.

6 Caso Índice-Día 1 Agapornis 1997 Juvenil presentado por inhabilidad para volar (sólo distancias cortas) tiende a correr. Examen Físico Alerta, buena condición corporal Cloaca/oral cavidad normal Plumaje irregular, y esponjado con plumaje de adulto pequeño y curvo. Hospitalizado en aislamiento Diferenciales?

7 Diagnósticos Diferenciales
Dermatitis /foliculitis infecciosa Infestación Parasitaria Enfermedad Viral Polyomavirus, Enfermedad de pico y plumas de los Psitácidos (PBFD) Trauma Sepsis Malnutrición Reacción a medicamentos Enfermedad endocrina

8 Pruebas Diagnósticas Sangre (Hemograma, Química Sanguínea)
10% de peso corporal (40g) Normal Extracción de plumas Puntas nudosas Histopatología Citología exprimido de folículos Recuerda: Usa Heparina como anticoagulante 10% de peso corporal en ml sangre para realizar la prueba. Ejem: Ave de 40g = 0.4ml de sangre.

9 Citología Respuesta leucocitaria mínima
Celular mononucleares ocasionales No bacterias No evidencia de organismos fungicos. Células epiteliales múltiples con acumulados basofilicos - ¿posible cuerpos de inclusión?—en el citoplasma

10 Pruebas Diagnósticas Signos consistentes en la necropsia
Hiperqueratosis del pico Necrosis del paladar Bolsa de Fabricio pobremente desarrollada Bazo disminuído de tamaño en adultos Citología de pluma Células epiteliales infladas Los cuerpos de incluición pueden ser engañosos Típicamente citoplasmáticas, pueden ser intranucleares. DNA PCR (RCP) Sangre Entera--> confirmación!

11 Preguntas: ¿Cuál es su definición del caso?
¿Es esto un brote potencial?

12 Definición del Caso: Agapornis juveniles
Plumaje irregular , esponjado y de mala calidad. Aparentemente sanos aparte del plumaje Folículos de plumas afectados sin infección aparente.

13 ¿Brote potencial? ¿Se han presentado Agapornis con problemas de plumaje en otros zoológicos? SI ¿Se habían presentado Agapornis con problemas de plumaje en este zoológico? NO Cuantos Agapornis esperaría encontrar con problemas de plumaje en este momento? Juveniles Esto puede ser un Brote, ya que se esperaba n=0 para esta parvada

14 Día 7 La examinación Pruebas diagnósticas
Las aves permanecieron alertas Comiendo bien y aumentando de peso y tamaño Plumaje mas errático que en la presentación inicial La examinación oral revelo ulceración del paladar con ramfoteca sin brillo Pruebas diagnósticas Se sometió sangre entera para poliomavirus y circovirus PBFD (Enfermedad de pico y pluma de los psitácidos) DNA Mas citologías de exprimidos de folículos de plumas con hallazgos similares que las anteriores.

15 Día 10 Resultado de histopatología de plumas colectadas en el Día 1
Necrosis epitelial 85% de las células contenían cuerpos de inclusión intranucleares o introcitoplasmáticos Resultados de la secuencia de DNA (+) Circovirus (PBFD) (--) Poliomavirus Eutanasia Sometido para histopatología

16 Día 17 Histopatología de la necropsia
Ligera involución de la bolsa de Fabricio Necrosis del paladar Anormalidades del plumaje en todo el cuerpo No más hallazgos

17 Signos clínicos Reemplazo de plumas de muda – particularmente en zonas bajas en animales jóvenes Distrofia (torcidas, estrechas, apelmazadas) plumaje que deja de crecer en cuanto emerge Lesiones en pico Usualmente en la rinoteca Grietas, falta de brillo, ulceraciones del paladar, enlongado Inmunosupresión Juega un papel en el desarrollo de otras enfermedades y la aparición de PBFD en casos crónicos Enfermedad progresiva Incubación 20-25 días a años No produce un estado de portador sano Incubación prolongada que puede producir la aparición de portadores.

18 Signos clínicos-Agudos
Los pollos son los clásicos Nunca tienen plumas normales No pueden volar Lesiones en pico Infecciones secundarias

19 Signos clínicos-Crónicos
Aves adultas Plumaje normal que es gradualmente reemplazado por plumaje anormal Posible lesión en pico

20 ¿Brote Potencial? ¿Se han presentado Agapornis con problemas de plumaje en otros zoológicos? SI ¿Se ha presentado Agapornis con problemas de plumaje en este zoológico? NO ¿Cuantos Agapornis esperaría que presentaran problemas de plumaje en este tiempo? Pollos Esto puede ser un Brote, al esperar n=0 para esta parvada

21 Definición del caso clínico
Agapornis pollos Plumaje irregular de mala calidad Aparentemente sanos aparte del plumaje Folículos de plumas afectadas sin infección aparente PBFD secuencia de DNA POSITIVO

22 Sangre para PBFD secuencia de DNA
Resultado en 72 horas Aves en riesgo separados en positivos y negativos Se repite la prueba en intervalos de 90 días Si negativo en dos ocasiones, liberar con restricciones de reproducción: No infectados: n= 30 Si positivo, mantener por otro período de prueba Si + separar de otros +’s por 90 días Si – en la segunda prueba, liberar con restricciones reproductivas Si + dos veces, eutanasia con post mortem completo Infectados: n= 25

23 Agente etiológico de PBFD
Circovirus No-envuelto Isométrico/Esférico DNA sencillo Partícula viral mas pequeña Relativamente estable en el ambiente NO afectada por desinfectantes “Descubierto” en Australia 1970’s, pudo haber estado presente en los 1800’s Endémica en poblaciones de psitácidos en libertad y cautiverio

24 Definición del Caso Visiblemente aparente/anormalidades de pico substanciales 2 PP, 3FL (Todos pollos) Visiblemente apatente/anormalidades de plumaje substanciales 2 PP, 10 FL (Jóvenes adultos) Postmortem completo de estos individuos Necropsia completa Preparación citológica de folículo de pluma para cuerpos de inclusión PBFD secuencia de DNA Se desconoce el origen del Agapornis que no era de la colección Se sospecha que fue liberado por alguien del público

25 Especies susceptibles
Aviar Psitácidos del viejo mundo son mucho mas susceptibles Agapornis y Cacatuas Del nuevo mundo son susceptibles, con mas probabilidad de recuperarse El rango exacto de huéspedes se desconoce Los columbiformes tienen un circovirus separado que es específico de la especie. Los psitácidos tienen un circovirus común a todas las especies. Otras aves no-psitácidas pueden seroconvertir Pero no produce la enfermedad clínica

26 Preguntas: ¿Cuál es su definición del caso?
¿Es esto un brote potencial?

27 Definicion del caso clinico
Pcitacidos son suceptibles a PBFD. Plumaje, particularmente el plumon presentan anormalidades. Lesiones en el pico o en el paladar.

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29 Factores de Transmisión
Parece ser el factor primario de infección La eliminación del grupo de edad reduce el potencial de transmisión La fuente primaria de infección es polvo de folículo de pluma que contamina el ambiente El virus se puede eliminar oralmente y en el excremento Inhalación (primaria), ingestión Transmisión vertical La incubación artificial no la elimina

30 Cierre del Caso El caso es cerrado en el sentido CLÍNICO
El problema es diagnosticado y resuelto La epidemiología fue estrictamente CONTROL SIN EMBARGO, vea más allá de lo que se ve inmediatamente ¿De dónde se originó este Brote? ¿Qué permitió que los 5 animales fueran infectados? ¿Podría esto suceder nuevamente? La Epidemiología es ahora PREVENCIÓN

31 PREVENCION Necesitamos saber todos los detalles de como ocurrio el brote para que no suceda lo mismo en un futuro. ¿Cómo y por qué? Futuros Brotes:

32 Control Cuarentena-durante el Brote
Aislamiento y prueba de individuos en riesgo Monitoreo de individuos potencialmente susceptibles Eliminar la reproducción (remover el grupo de edad susceptible) Remover aves con mal plumaje Evaluar aves de reemplazo con más cuidado

33 Control Cuarentena—a largo plazo Controlar la reproducción
Parvadas de un sólo sexo para el 2000 Implementar el monitoreo pre-embarque Prevenir la entrada de PBFD “+”s

34 Investigación del Ambiente
Revisión de todas las aves en riesgo por medio de examen físico Psitácidos Columbiformes-virus diferente = signos clínicos diferentes Eutanasia de todas las aves en riesgo con hallazgos consistentes con el presente caso Cuarentenar todas las aves en riesgo del exhibidor y colectar sangre para prueba contra PBFD secuencia de DNA

35 Moratoria de Reproducción para el control
NO permitida la reproducción Sólo pocos pollos presentes al no poder encontrar todos los nidos 1998 Se permite la reproducción Algunos pollos 1999 Número abundante de pollos nacidos La población creció de 50 a 100 en una temporada

36 ¿Cómo y por qué? Futuros Brotes:
Verano1999 Día 1: Múltiples pollos de Agapornis presentados con plumaje irregular y en mal estado Examen físico Pruebas diagnósticas

37 Examen físico Aves débiles y enfermas con animales pequeños en varios nidos, cavidad cloacal/oral normales Plumaje irregular, y condición pobre de plumaje de adulto Eutanasia (n=8) para pruebas diagnósticas por presentar tamaño pequeño

38 Pruebas Diagnósticas Pruebas de Sangre 10% del peso corporal (15gm)
Secuencia de DNA Extracto de plumas Puntas nudosas Remisión de citología e histopatología Respuesta hererofílica abundante Bacilos Bacterianos Células epiteliales con acumulación basofílica en el citoplasma

39 Definición del caso para el diagnóstico Clínico:
Pollos de Agapornis Plumaje irregular en mal estado Apariencia enfermiza Folículos de plumas con bacterias

40 ¿Brote Potencial? ¿Se han presentado Agapornis con problemas de plumaje en algún zoológicos? Si ¿Se han presentado Agapornis con problemas de plumaje en este zoológico? ¿Cuantos Agapornis esperaría encontrar con problemas de plumaje en este momento? Pollos

41 ¿Brote Potencial? Esto puede ser un Brote
La expectativa es n=0 para pollos en esta parvada y debería estar terminado el problema de PBFD

42 Brote Potencial Día 4 Día 7 La secuencia de DNA es NEGATIVA para PBFD
Pollos adicionales fueron examinados y se colectaron plumas Preparación citología de exprimido de cañón de pluma Consistente con el examen anterior, además de encontrar elementos fúngicos Histopatología del Día 1 Bolsa de Fabricio normal, mucosa oral normal, dermatitis extensa asociada con folículos de plumas

43 Definición del caso para el diagnóstico Clínico:
Pollos de Agapornis Plumaje irregular en mal estado Enfermedad aparente Folículos de plumas con bacterias Negativo a PBFD secuencia de DNA

44 ¿Brote Potencial? ¿Se han presentado Agapornis con problemas de plumaje en algún zoológico? Si ¿Se han presentado Agapornis con problemas de plumaje en este zoológico? ¿Cuantos Agapornis esperaría que presentaran problemas de plumaje en este momento? Todos los Pollos

45 ¿Brote Potencial? Esto es un Brote ya que se espera encontrar n=0 de pollos en esta parvada, pero no es PBFD del Brote anterior

46 Investigación de origen
1995 25% de la parvada se recibió de la segunda institución Cuarentena completa y liberados Pruebas virales Polioma y circovirus realizada en el 50 % de la adquisición

47 Fuente de brote secundario.
Cambio poblacional repentino, incremento en el uso de nidos Se determinó realizar saneamiento en los nidos - desinfección Se administró terapia de soporte con fluidos y antibióticos a los pollos afectados Eutanasia de los pollos mas afectados con histopatología para vigilar la no presencia de PBFD

48 BIBLIOGRAFIA 1. Kiatipattanasakul-Banlunara, W., R. Tantileartcharoen, K. Katayama, K. Suzuki, T. Lekdumrogsak, H. Nakayama, and K.Doi Psittacine beak and feather disease in three captive sulphur-crested cockatoos (Cacatua galerita) in Thailand. J. Vet. Med. Sci. 64: 2. Kock, N.D., P.U. Hangartner, and V. Lucke Variation in clinical disease and species susceptibility to psittacine beak and feather disease in Zimbabwean lovebirds. Onderstepoort J. Vet. Res. 60: 3. Rahaus, M., and M.H. Wolff Psittacine beak and feather disease: a first survey of the distribution of beak and feather disease virus inside the population of captive psittacine birds in Germany. J. Vet. Med. Ser. B 50: 4. Ritchie, B.W., R.D. Niagro, K.S. Latimer, W.L. Steffens, D. Pesti, J. Ancona, and P.D. Lukert Routes and prevalence of shedding of psittacine beak and feather virus. Am. J. Vet. Res. 52: 5. Ritchie, B.W., F.D. Niagro, K.S. Latimer, P.D. Lukert, W.L. Steffens, P.M. Rakich, and N. Pritchard Ultrastructural protein composition and antigenic comparison of psittacine beak and feather disease virus purified from four genera of psittacine birds. J. Wildl. Dis. 26: 6. Ritchie, B.W., and K. Carter Circoviridae. In: Avian Viruses Function and Control. Wingers Publishing, Inc., Lake Worth, Florida. Pp: 7. Ritchie, P. A., I.L. Anderson, and D.M. Lambert Evidence for specificity of psittacine beak and feather disease viruses among avian hosts. Virology 306: