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Test de detección de la Toxina A de Clostridium difficile Estudiantes: Fabricio José Sevilla Acosta Luis Benjamín Ramírez Cisneros Karla Coto Chinchilla.

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1 Test de detección de la Toxina A de Clostridium difficile Estudiantes: Fabricio José Sevilla Acosta Luis Benjamín Ramírez Cisneros Karla Coto Chinchilla Jeffry Jiménez Delgado

2 CONTENIDO INTRODUCCIÓN – Clostridium difficile y Colitis seudomembranosa – Toxinas A y B – Prueba de Citotoxicidad Celular TEST DE DETECCIÓN DE TOXINA A DE Clostridium difficile – Características – Fundamento – Metodología – Diagnóstico

3 INTRODUCCIÓN

4 Clostridium difficile Bacilo anaerobio Gram positivo. Patógeno nosocomial. Produce diarrea y colitis pseudomembranosa. Asociado a antibióticos de gran espectro: ampicilina y cefalosporinas.

5 Clostridium difficile Figura 1. Clostridium difficile en tinción de Gram.

6 Clostridium difficile Figura 2. Colonias de Clostridium difficile en Agar Sangre.

7 Clostridium difficile Figura 3. Clostridium difficile en microscopía electrónica de barrido.

8 Colitis seudomembranosa Figura 4. Colon con Colitis seudomembranosa debido a Clostridium difficile.

9 Toxinas Toxina A: – Secreción fluida, daño a mucosa e inflamación. Toxina B: – Más potente. – No es enterotóxica.

10 Prueba de Citotoxicidad celular Fundamento: – Citotoxicidad: Interfiere en división celular. – Rojo neutro: Se acumula solo dentro de células viables. Método: – Se coloca la toxina y células en cultivo con rojo neutro (células Vero). Se determina concentración de rojo neutro tras un tiempo. Características: – Determina Toxina B. – Tarda 48h.

11 TEST DE DETECCIÓN DE TOXINA A DE Clostridium difficile

12 Características Inmunoensayo rápido para detección cualitativa de la Toxina A de C. difficile en heces. Tarda 30min en dar Diagnóstico.

13 Fundamento de la prueba Anticuerpos monoclonales frente a la Toxina A de C. difficile unidos a partículas de látex color azul. Se determina mediante reacciones de tipo Antígeno- Anticuerpo que producen cambios de color.

14 METODOLOGÍA

15 Preparación de muestra 1.Añadir 1ml de diluyente de muestra a un tubo de micro-centrífuga (microtubo). 2.Añadir 100µl de heces líquidas o una porción de heces de 5mm de diámetro si son sólidas (dentro de 3h de su recogida). 3.Tapar el tubo y mezclar en vortex durante 10-15s. 4.Centrifugar a rpm por 10min. 5.Utilizar sobrenadante como MUESTRA.

16 Equipo

17

18 Metodología 1.Adición de 125µl de muestra a almohadilla absorbente en Ventana de Muestra. Anticuerpos monoclonales anti- Toxina A de ratón unidos a partículas azules de látex. Reacción Ag-Ac.

19 Metodología 2.Migración por capilaridad a la tira de prueba. Complejo Ag-Ac-Látex. Anticuerpos monoclonales de ratón unidos a látex azul y la muestra migran por tira de prueba.

20 Metodología 3.Ventana de resultados. Reacción complejo Ag-Ac- Látex y Anticuerpo fijado. Línea Azul.

21 Metodología 4.Ventana de control. Muestra sigue migrando y entra en contacto con anticuerpos de conejo anti- ratón y se forma una línea azul. Reacción complejo Ag-Ac- Látex y Anticuerpo Anti- Ratón. Indica que la prueba ha funcionado correctamente.

22 DIAGNÓSTICO

23 Diagnóstico Consiste en demostrar la presencia de toxinas de C. difficile en heces. Se realiza siempre que un paciente tenga diarrea asociada a uso de antibióticos. Se realiza 30min después de colocada la muestra.

24 Diagnóstico * Pued e haber diferencia entre el color en ventana de Control y Resultados. ** Si no aparece la línea de Control se ensayará de nuevo. *** Si la línea no es azul en Resultados se considera negativa.

25 DEMOSTRACIÓN

26 GRACIAS


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