ENFERMEDADES DE LA VID. Ing. Agr. Vivienne Gepp, MSc.

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1 ENFERMEDADES DE LA VID. Ing. Agr. Vivienne Gepp, MSc.
Curso de Protección Vegetal Frutícola. Año 2007.

2 Fenología de la vid

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4 PERONOSPORA o MILDIU Plasmopara viticola Oomycete

5 PERONOSPORA o MILDIU Plasmopara viticola

6 PERONOSPORA o MILDIU Plasmopara viticola

7 PERONOSPORA o MILDIU Plasmopara viticola

8 PERONOSPORA

9 PERONOSPORA

10 PERONOSPORA

11 PERONOSPORA

12 PERONOSPORA Ciclo: invierno  oosporas
primavera  zoosporangios  infección primaria  inóculo secundario  ciclos secundarios  ...  verano  ciclos ¿secundarios?  ...  otoño  ciclos ¿secundarios?  ...  hoja caída ¿Oosporas  zoosporangios en verano? días

13 Desarrollo en el espacio, ciclos de la enfermedad
PERONOSPORA Desarrollo en el espacio, ciclos de la enfermedad

14 PERONOSPORA Condiciones favorables: invierno húmedo primavera lluviosa
verano lluvioso 22-25ºC tejido joven, en activo crecimiento.

15 PERONOSPORA MANEJO DEL CULTIVO drenaje primeros focos poda de verano

16 PERONOSPORA CONTROL QUÍMICO Objetivos principales

17 PERONOSPORA FUNGICIDAS: de contacto: Cúpricos Mancozeb, maneb, metiram
Propineb, Ziram, Ferbam Folpet, Captan Tolyfluanid Strobilurinas: Azoxystrobin, Pyraclostrobin, etc.

18 PERONOSPORA FUNGICIDAS SISTÉMICOS:
Fosetil aluminio, Fosfito de potasio Metalaxil, Benalaxil Cimoxanil Dimetomorph Restricciones

19 POLVILLO, CENIZA u OIDIO
Uncinula necator Ascomycete

20 OIDIO

21 OIDIO

22 Ciclo del OIDIO Yemas Brotes nuevos ¿Cleistotecios? Sarmientos Hojas
Conidios Racimos

23 OIDIO Condiciones: ºC alta humedad, sin lluvias brotes jóvenes

24 POLVILLO, CENIZA u OIDIO
FUNGICIDAS: Azufre Inhibidores de la Biosíntesis del Ergosterol Strobilurinas: Azoxystrobin, Pyraclostrobin Tolyfluanid

25 BOTRYTIS. FP: Botryotinia fuckeriana Ascomycete FI: Botrytis cinerea
(Deuteromycete)

26 BOTRYTIS.

27 BOTRYTIS.

28 BOTRYTIS.

29 BOTRYTIS. Condiciones para la infección: heridas grosor de cutícula
variedad (tipo de racimos, tipo y microporos de piel, composición química, fitoalexinas) temperatura humedad

30 BOTRYTIS. MANEJO DEL CULTIVO. ¿Control biológico? evitar: humedad,
heridas, inóculo ¿importancia del inóculo? ¿Control biológico? Trichoderma sp.

31 Resistencia a Botrytis
Susceptibilidad Racimos  compactos Fuente: Ellison, Ash y McDonald. 1997

32 Temperatura y humedad relativa media
Resultados en Tannat Temperatura y humedad relativa media Temperatura 19,3 ºC 22,1 ºC Humedad relativa 77,7 % 75,2 %

33 Fungicidas para Botrytis.
Multisitios: captan, folpet Bencimidazoles, dietofencarb Dicarboximidas: procimidone, iprodione Anilopirimidinas: cyprodinil, pyrimetanil, mepanipyrim. Fenilpirrol: fluodioxonil Hidroxianilida: fenhexamid 2,6 dinitro anilina: fluazinam Imidazoles: procloraz Sulfamidas: diclofluanida, tolyfluanid

34 Resistencia a fungicidas
Existen fungicidas de alto riesgo, otros de medio y otros de bajo riesgo de generar resistencia. A su vez existen enfermedades de alto riesgo, medio y bajo de generar problemas de resistencia. La combinación de ambos riesgos es lo que nos va a importar al momento de definir un estrategia de manejo manejo. Así tendremos combinaciones como la de la aplicación de un bezimidazol para el control de un Penicillium en citrus (un fungicida de alto riesgo frente a una enfermedad de alto riesgo lo que resultará en el máximo de riesgo de tener problemas. En el otro extremo la aplicación de un fungicida de contacto para el control de un hongo de suelo es una combinación de mínimo riesgo.

35 Resistencia de Botrytis cinerea a fungicidas
Bencimidazoles, dietofencarb Dicarboximidas: iprodione Anilopirimidinas: cyprodinil, pyrimetanil, mepanipyrim Fenilpirrol: fluodioxonil Hidroxianilida: fenhexamid 2,6 dinitro anilina: fluazinam Imidazoles (IBE clase I): procloraz

36 Resistencia de Botrytis cinerea a fungicidas
También: Sulfamidas: diclofluanida, tolyfluanid Ftalimidas: captan, folpet Ditiocarbamatos: tiram

37 EXCORIOSIS. Phomopsis viticola

38 EXCORIOSIS. Phomopsis viticola

39 EXCORIOSIS

40 EXCORIOSIS

41 EXCORIOSIS

42 EXCORIOSIS Ciclo: Necesita: 21 -30 días frío (23ºC) lluvias
brotes jóvenes

43 EXCORIOSIS Poda Fungicidas: Dinitro ortro cresol, arsenito de sodio
brotes 1-3 cm y 6-12 cm Captan, Folpet, Maneb, etc.

44 ANTRACNOSIS Elsinoe ampelina Sphaceloma ampelinum

45 ANTRACNOSIS Elsinose ampelina Sphaceloma ampelinum

46 ANTRACNOSIS

47 ANTRACNOSIS

48 ANTRACNOSIS Ciclo: Condiciones: primavera:
esclerotos en bordes de cancros  conidios bayas caídas  conidios o ascosporas infeccion de tejido joven Condiciones: precipitaciones óptimo 24-26ºC  síntomas en 4 días a 32ºC

49 ANTRACNOSIS MANEJO: Variedades muy sensibles, ej.: Cardinal, Italia, Thompson seedless (Sultanina) cúpricos, ditiocarbamatos, ftalimidas, tolyfluanid,strobilurinas, diatinon

50 Enfermedades de la madera

51 Enfermedades de la madera

52 Enfermedades de la madera

53 Enfermedades de madera

54 Enfermedades de madera
Eutipiosis Eutypa lata = E. armeniacae Esca Varios géneros: Stereum, Phellinus, etc.

55 VIRUS DE LA VID.  50 agentes Los más importantes:
Closterovirus - Enrulamiento (Leaf roll) Nepovirus - Degeneración infecciosa (Fan leaf, Court noue)

56 LEAF ROLL o ENRULAMIENTO.
Grapevine leaf roll associated viruses: GLRaV I GLRaV II GLRaV III GLRaV IV * GLRaV V GLRaV VI GLRaV VII GLRaV VIII * * GLRaV III - mundial, Uruguay

57 Rendimiento/ planta Peso racimo (g)
INCIDENCIAS DEL ENRULAMIENTO Y ENROJECIMIENTO FOLIAR SOBRE EL COMPORTAMIENTO DE VID cv. TANNAT (HARRIAGUE) Rendimiento/ planta Peso racimo (g) normal enferma Canelones 7,1 3,8 ** 262 172 ** Montevideo 4,7 3,5 * 179 146 * 11,8 4,6 ** 216 157 ** Spínola, I Investigaciones Agronómicas N° 3:10-14.

58 INCIDENCIAS DEL ENRULAMIENTO Y ENROJECIMIENTO FOLIAR SOBRE EL COMPORTAMIENTO DE VID cv. TANNAT (HARRIAGUE) Grado alcohólico Kg grado/planta INIALB 12,6 9,4 117,8 45,9 8,7 7,9 99,4 34,7 Joanicó 1 8,9 7,9 ** 62,2 29,8 ** Joanicó 2 6,7 ** 36,8 23,5 ** INIA LB 12,0 9,2 ** 85,3 39,0 ** Mdeo 10,2 10,1 NS 120,0 45,8 ** Spínola, I Investigaciones Agronómicas N° 3:10-14.

59 LEAF ROLL o ENRULAMIENTO.
No hay cvs totalmente resistentes Pie americano – tolerante – se mantiene latente

60 LEAF ROLL o ENRULAMIENTO.
TRANSMISIÓN: prop. vegetativa chanchito blanco Planococcus ficus, Pseudococcus longispinus

61 ESTUDIOS DE TRANSMISIÓN DE GLRaV 3 POR CHANCHITO BLANCO EN URUGUAY
Planococcus ficus plaga en vid. Maman y Peyrou (1997) - transmisión en laboratorio. Maeso et. al (1999) y (2000) – estudios de transmisión: confirmó la transmisión en Uruguay. en laboratorio: 10 insectos pueden transmitir, difícil adquisición (por lo menos 7 días y % bajo), se transmite rápido (15-30 minutos). Fuente: Maeso, 2002.

62 NEPOVIRUS Grapevine fan leaf (GFLV)
Degeneración progresiva (Nepovirus europeos): Grapevine fan leaf (GFLV) Arabis mosaic Strawberry latent ringspot Tomato black ring etc. Decaimiento (Nepovirus americanos): Peach rosette mosaic Tomato ringspot Tobacco ringspot

63 NEPOVIRUS Síntomas: Deformación, Reducción de lámina foliar, Coloraciones anormales, Acortamiento e irregularidad de entrenudos, nudos dobles, fasciaciones, Reducción número y tamaño de racimos, corrimiento (“millerandage”). Menor calidad y cantidad de rendimiento. Menor longevidad, prendimiento, y enraizado.

64 NEPOVIRUS Vides americanas y sus híbridos: muy sensibles a los nepovirus europeos y por esa vía se perjudica a la variedad. Vides europeas y sus híbridos: más sensibles a los nepovirus americanos.

65 FAN LEAF = COURT NOUE Grapevine fan leaf nepovirus (GFLV)

66 Grapevine fan leaf nepovirus
Transmisión: Xiphinema index España: en 14% de los viñedos y en 50% de los con GFLV. Italia: en 15% de los viñedos. Presente en Uruguay focalizado 1,3 a 1,5 m/año restos de raíces Resistencia a X. index en Vitis rotundifolia

67 SUSCEPTIBILIDAD VARIETAL
Susceptibles todas las V. vinifera y muy susceptibles V. rupestris. V. labrusca se infecta pero muestra pocos síntomas. Resistencia varietal: Muscadinia rotundifolia para cruzamientos. Resistencia a transmisión y alimentación de nematodos.

68 Manejo de virosis Control de transmisión: Material de propagación
Vectores: presencia control de nematodos control de chanchito

69 Manejo de virosis Métodos de saneamiento: Termoterapia.
Cultivo in vitro. Termoterapia + cultivo in vitro. Seguidos de comprobación de sanidad: indicadoras y ELISA.

70 ABIÓTICAS.

71 Daño de herbicida

72 DAÑO DE HELADA

73 Condiciones ambientales
MANEJO INTEGRADO Cultivar y portainjerto Ubicación del viñedo Calidad sanitaria Antagonistas Poda y conducción Fungicidas: ¿cuál producto? ¿cuándo aplicarlo? ¿cómo aplicarlo? Manejo de suelo y fertilización Modelos de predicción Fenología del cultivo Condiciones ambientales

74 MANEJO CULTURAL Plantas sanas Poda y conducción
Fertilización y manejo de suelo

75 CONTROL BIOLÓGICO Botrytis Oidio Nematodos Trichoderma harzianum
36% control, 52% fungicidas Ulocladium atrum, Chaetomiun cochliodes colonizan tejido necrótico Oidio AQ10 (Ampelomyces quisqualis) oidios, alta HR Nematodos

76 CRITERIOS DE SELECCIÓN DE FUNGICIDAS
Históricamente: efectividad, fitotoxicidad, precio, compatibilidad, efecto sobre abejas. Efectividad Fuentes de información: INIA Fungicide and Nematicide Tests CAB Abstracts 2000 New York and Pennsylvania Pest Management Recommendations for Grapes 2001 Pest Management Guide for Wine Grapes in Oregon

77 PRONÓSTICO Peronóspora Excoriosis Antracnosis Botrytis Criterios:
Fenología Clima y microclima

78 Fenología

79 Fenología

80 Fenología

81 BIBLIOGRAFÍA Arias Giralda, A. et al Los parásitos de la vid; estrategias de protección razonada. M.A.P. y A. 304 p Pearson, R.C.; Goheen, A.C Compendium of grapevine diseases. APS Press, St. Paul. 93 p Flaherty, D.L. et al Grape pest management. University of California Publication Nº p Internet IPM Resources on Grapes and Current