Determinación de la fuente de contaminación de un paciente

Contexto El paciente infectado fue hospitalizado para una operación. Durante la hospitalización, recibió diferentes cuidados y tratamiento : Perfusión Líquida con analgésicos Limpieza de la cicatriz ¿Catéter contaminado? ¿Perfusión líquida contaminada? ¿Suero fisiológico de lavado contaminado? ¿Compresas contaminadas?

1.Detección de contaminantes bacterianos en compresas

Materiales Placa de agar especial de contacto Bolsa de compresas para test

1.1. Abre la bolsa de compresas. ADVERTENCIA! La muestra es relizada en asepsia alrededor del mechero Bunsen Aplica en la compresa, la “placa de agar de contacto”. Presiona ligéramente y mantén el contacto aproximadamente 10 segundos.

1.3. Usa finalmente unas pinzas para despegar la compresa y después cierra la caja Escribe en el fondo de la caja “Caja 1” y el numero de tu mesa. Incuba 24 horas a 37°C.

2.Detección de contaminantes bacterianos en suero fisiológico de limpieza

Materiales disponibles Placa de Petri con agar Suero fisisiológico (PW) a investigar Pipeta estéril Rastrillo de extensión estéril

2.1. Abre la botella de “PW”( suero fisiológico), y con una pipeta estéril, toma 0,5 mL. ADVERTENCIA! La muestra es relizada en asepsia alrededor del mechero Bunsen Pon 2 o 3 gotas en la superficie de la placa de agar.

2.3. Con un rastrillo de extensión, distribuye las gotas en la superficie del agar Cierra la caja. Escribe en el fondo de la caja “ caja 2”, y el número de tu mesa. Incuba 24 horas a 37°C Rastrillo de extensión Agar Extiéndelas completamente sobre toda la superficie del agar. No presiones demasiado fuerte para evitar dañar el agar.

3.Detección de contaminantes bacterianos en un catéter

Materiales disponibles Catéter para test Agar en placa de Petri torunda

3.1. Coge el cateter con unas pinzas, aproximadamente a 1 cm del extremo ADVERTENCIA! La muestra es relizada en asepsia alrededor del mechero Bunsen Con la torunda, frota dentro del catéter junto a este extremo.

3.3. Con la torunda, realiza una extensión en la superficie de la placa de agar. Realiza estrías finas Cierra la caja. Escribe en el fondo de la caja “Box 3”, y el númeror de tu mesa. Incuba 24 horas a 37°C Extiende por toda la superficie del agar. No presiones muy fuerte para evitar que se dañe el agar

4.Detección de contaminación bacteriana en líquido de perfusión

Materiales disponibles Líquido de perfusion (PL) a testar Sistema de filtrado bajo presión Placa de Petri pequeña con agar Filtro bacteriano (preinstalado en sistema de filtrado)

Principio de filtrado de membrana para detección bacteriana

4.1. En el sistema de filtrado pre-instalado, comprueba la presencia de un filtro bacteriano 4.2. Vierte el contenido del líquido de perfusión (PL) en el centro del filtro. Filtro bacteriano visto desde su cara superior ADVERTENCIA! La muestra es relizada en asepsia alrededor del mechero Bunsen. Ten cuidado: no poner gotas en los paredes del sistema de filtrado.

4.3. Deja correr la presión en el sistema de filtrado, para desencadenar el vacío hasta filtrar todo el líquido. Después de la filtración, cierra la llave del agua para detener el vacio.

4.4. Retira la parte de arriba del sistema de filtrado (quita antes la abrazadera negra grande) para así acceder al filtro Con unas pinzas, recubre el filtro y deposítalo inmediatamente en una placa Petri pequeña.

Tras depositarlo, aplica una ligera presión con las pinzas para permitir una buena adhesión del filtro en el agar Cierra la caja. Escribe en su fondo“Box 4”, y el número de tu mesa. Incuba 24 horas a 37°C

5.Resultados El segundo dia, tras incubación, observa la superficie de las diferentes placas de Petri para busacar colonias bacterianas. ¿Cuál es el origen probable de contaminación ?