DÍPTEROS Blga. Bertha B. Moreno Rodríguez

Presentación del tema: "DÍPTEROS Blga. Bertha B. Moreno Rodríguez"— Transcripción de la presentación:

1 DÍPTEROS Blga. Bertha B. Moreno Rodríguez
Responsable de Entomología Médica Laboratorio Referencial de Salud Pública GERESA-La Libertad

2 DÍPTEROS Son insectos, caracterizados porque sus alas posteriores se han reducido a halterios, es decir, que poseen sólo dos alas membranosas y no cuatro como el resto de los insectos.

3 CICLO BIOLÓGICO

4 CICLO BIOLOGICO DE CULEX
Adulto Huevo Pupa Larva

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10 CICLO BIOLOGICO DE LUTZOMYIA

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12 POSICION Y COLORACION DEL ADULTO

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14 FORMA DEL HUEVO

15 POSICION DE LA LARVA

16 POSICION DE LA PUPA

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19 HÁBITAT Y ENFERMEDADES QUE TRANSMITEN

20 MALARIA

21 DENGUE

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25 RIESGOS QUE FAVORECEN LA INTRODUCCION Y REPRODUCCION DEL VECTOR

26 FIEBRE AMARILLA

27 EPIDEMIOLOGICA DE LA FIEBRE AMARILLA
CICLO SELVATICO CICLO URBANO

28 LEISHMANIOSIS

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31 MINISTERIO DE SALUD Bartonelosis en el Perú Tasa de Incidencia - Curva Histórica Fuente: Ministerio de Salud - DGSP-DEAIS

32 TECNICAS DE CAPTURA Y CONSERVACION

33 METODOS DE CAPTURA I. Métodos Atractivos
a) Cebos Naturales: Cebo humano o animal Trampa Shannon b) Cebos artificiales: Trampas de Luz, CO feromonas. II. Métodos No Atractivos a) Búsqueda Activa: adultos en reposo recipientes positivos larvas en criaderos b) Captura Pasiva: Trampa de succión Trama de camioneta

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37 CONSERVACION DE MUESTRAS

38 CONSERVACION DE MUESTRAS LARVARIAS
Durante la caracterización del criadero (arrozal, acequia, orilla de río, etc.), las larvas colectadas serán colocadas en viales ( frascos de penicilina) con agua del criadero. Ya en el E.S. se colocarán en un cartucho de anestésico dental con alcohol 70%. No se colocarán más de 15 larvas por tubo, ni se mezclarán larvas de otros criaderos. El tubo-muestra, deberá contener una etiqueta en el interior de éste, estar herméticamente tapado y sin burbujas. El tubo-muestra será empaquetado y engrapado al formato de registro, respectivamente.

39 La Libertad Gran Chimú Lucma Chuquillanqui Arrozal cm 26 – 06 – 2008 D. Vela C. 3 cm

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41 CONSERVACION DE MUESTRAS DE MOSQUITOS
En el campo: Para mantener los insectos vivos es necesario colocarlos en un vaso colector ( aprox. 30 por vaso), con una motita de algodón humdecido con agua azucarada y papel toalla húmedo en la base de cada vaso colector, todos en una caja de teknoport mantenida a la sombra. Ya en el E.S: Una vez culminada la colecta de mosquitos, se procede a matarlos con cloroformo o colocarlos en la nevera por algunos minutos. Una vez muertos se colocaran los mosquitos uno a uno con ayuda de una pinza, teniendo cuidado de no colocar uno sobre otro, entre una capa y otra capa, y así sucesivamente hasta colocar todos los insecto, colocando en la útltima capa una etiqueta con todos los datos de la colecta.

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43 CONSERVACION DE MUESTRAS
Con ayuda del palito humedecido en alcohol al 70%, tomar suavemente los mosquitos seleccionados e introducirlos uno a uno en un tubo de anestésico dental conteniendo alcohol al 70%. No se colocarán más de 15 mosquitos por tubo, teniendo cuidado siempre de no juntar muestras de otras trampas aun siendo de la misma vivienda.

44 CONSERVACION DE MUESTRAS
Etiquetar la muestra en el interior de cada tubo, correctamente rotulada con lápiz en papel bond blanco de 3 x 2 cm: departamento, provincia, distrito, localidad, lugar y tipo de colecta, fecha y nombre del colector. Tapar herméticamente y sin burbujas en su interior. Las muestras serán colocadas en una bolsa pequeña y engrapada al formato respectivo.

45 La Libertad Sánchez Carrión Chugay Yanasara FAM: Ríos de la Cruz
ROTULADO DE LA MUESTRA La Libertad Sánchez Carrión Chugay Yanasara FAM: Ríos de la Cruz Intradomicilio Trampa de luz 18:00 a 06:00 horas M. García Espinoza

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47 REMISION DE MUESTRAS Los formatos de registro serán llenados según corresponda, en su totalñidad. Los formatos serán revisados y firmados por el responsable del E.S. y/o Red correspondiente. Los formatos revisados, correctamente llenados y acompañados de las muestras, serán remitidos al Laboratorio de Referencia Regional, respectivamente.

48 INDICADORES ENTOMOLOGICOS DE MOSQUITOS

49 INDICADORES ENTOMOLOGICOS PARA AEDES AEGYPTI
I. A.: CASAS POSITIVAS X 100 CASAS INSPECCIONADAS I.R : RECIPIENTES POSITIVOS X 100 RECIPIENTES INSPECC. I.B.: RECIPIENTES POSITIVOS X 100 I.A.= INDICE AEDICO I.R.= INDICE DE RECIPIENTE I.B.= INDICE DE BRETEAU

50 INDICADORES ENTOMOLOGICOS PARA ANOPHELES
IPHN: INDICE DE PICADURA MOSQUITO/HOMBRE/NOCHE IPHH: INDICE DE PICADURA MOSQUITO/HOMBRE/HORA I.P.: INDICE DE PARIDAD I.E.: INDICE ESPOROZOITICO D.L.: DENSIDAD LARVARIA I.C.P.: INDICE DE CRIADEROS POSITIVOS

51 INDICADORES ENTOMOLOGICOS PARA LUTZOMYIA
Indice de Captura por Trampa : ICT = Nº de mosq. colectados Nº de Trampas utilizadas

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53 RANGOS DE DENSIDAD AEDINA
BAJO : < 0.1 % MEDIANO : 0.1 % a 2 % ALTO : > 2 %

54 GRACIAS