La rata como animal de experimentación en microcirugía Conceptos generales Jesús Gracia Romero. F.E.A. Cirugía Infantil. Hospital Miguel Servet.

La rata como animal de experimentación en microcirugía Práctica en dedo de guante y gasa. Práctica de disección "in vivo" Disección aorta‑cava / Disección nervio ciático / Disección de carótidas Cirugía vascular: - Anastomosis termino‑terminal de aorta abdominal y carótida - Término‑terminal de arteria/vena femoral - Término‑lateral arterial (carótidas) y venosa (porto‑cava) Cirugía nerviosa

La rata como animal de experimentación en microcirugía Utilización del microscopio y de la gafa‑lupa Instrumental. Manejo. Mantenimiento y cuidados Materiales de sutura Disposición general del material, postura del cirujano, etc. Anestesia del animal. Colocación en la tablilla Vías de abordaje. Colocación de separadores. Posibilidades quirúrgicas

La rata como animal de experimentación en microcirugía Papel del veterinario  Espacio quirúrgico adecuado. Área subdividida en otras especificas: jaulas de espera o de recuperación.. Instrumentos estériles. Desinfección de las tablas, etc. Evaluación prequirúrgica. Tiempo de ayuno. Preparación del animal. Lavado, rasurado amplio, aplicación de antiséptico. Vigilar la aplicación de soluciones alcohólicas. Aplicación de paños estériles. Preparación del cirujano: Lavado de manos. Guantes. Mascarilla. Gorro. Marcado del animal Valoración del animal durante la cirugía. Sangrado. Profundidad de la anestesia. Temperatura corporal. Botellas de agua caliente. Tablilla calefactada. Lavados con suero caliente. Observación durante el despertar. Mantenerlo caliente. Lámpara de calor. Historia clínica de cada animal, en su jaula. Analgesia postoperatoria

La rata como animal de experimentación en microcirugía ANESTESIA - Por inhalación: éter anestésico - I.M. (ketamina 50 mg.(5 cc), valium 10 mg (2 cc) y atropina 1 mg. (1 cc). 1 cc x 300 g. de rata - Intraperitoneal. Ketamina 30 mg/kg + Valium 4 mg/kg + Atropina 1mg/kg ó Pentotal 40 mg/kg + Atropina 1 mg/kg.

La rata como animal de experimentación en microcirugía MATERIAL MICROQUIRÚRGICO - Pinzas de relojero rectas - Pinzas de relojero anguladas 45º (sirve de porta) - Tijeras tipo Wescott - Microclamps vasculares - Suturas 9 y 10 ceros.

Cada alumno debería disponer de: MATERIAL QUIRÚRGICO - Pinzas de relojero rectas - Pinzas de relojero anguladas 45º - Tijeras microquirúrgicas tipo Wescott - Microclamps vasculares - Suturas 9 y 10 ceros Tablilla-soporte de la rata. Esparadrapo de fijación. Jeringa con aguja de insulina. Separadores “automáticos”. Bolitas de algodón para hemostasia. Gasas. Vaso-recipiente para el instrumental. Pinza de disección con dientes. Tijera “macro”. Microscopio ó gafa lupa.

Vías de abordaje:

Sutura arterial termino-terminal Evitar pinzar todo el espesor del vaso. Coger la adventicia Disecar y ligar las ramas colaterales Disecar suficiente longitud de vaso para poner los clamps Vaciar la sangre que queda en las bocas Seccionar la adventicia traccionando de ella a modo de tienda de campaña Dilatar la luz del vaso, sin desgarrar la intima Colocar debajo un trocito de goma de globo para contrastar Seccionar el vaso suturar

Sutura arterial termino-terminal

Sutura arterial termino-terminal Aproximar las bocas, aproximando el clamp Afrontar lo mas posible las bocas Primer punto en cara antero‑lateral. Nos servirá para traccionar de el. Los nudos deben hacerse planos Segundo punto a 120 grados del primero Uno o varios puntos entre los dos primeros Después se rota el clamp 180 grados, para suturar la cara posterior Se dan puntos promediando

Sutura arterial termino- terminal

Sutura arterial termino-terminal Para valorar la sutura Quitar el clamp Hacer compresión suave, 5 minutos Vaciar un segmento del vaso distalmente a la anastomosis, con dos pinzas Observar el relleno del segmento vaciado

Sutura arterial termino- terminal

Anastomosis porto-cava Sutura nerviosa