LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO INTEGRANTES: Angi Medina Sindy Seña.

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1 LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO INTEGRANTES: Angi Medina Sindy Seña

2 INTRODUCCIÓN El Liquido cefalorraquídeo es el tercer medio liquido del organismo, el del sistema nervioso. Es un liquido secretado y reabsorbido sin interrupción la renovación se produce gracias a las vellosidades de la región lumbar, renovándose completamente cada 24 horas. Se forma en los plexos coroides ventriculares o bien en el mismo tejido encefálico, penetrando en los ventrículos del cerebro a través del filtro formado por el plexo coroideo del primero y segundo ventrículos. LCR a la vez que constituye un medio nutritivo es también una vía de excreción de productos metabólicos, cuando además con funciones mecánicas de amortiguación y regulación del contenido intracraneal.

3 El líquido cefalorraquídeo es, un líquido incoloro, de reacción débilmente alcalina con un pH de 7,3 a 7, 4 y una densidad de 1.006 a 1.008. Los componentes químicos normales, obtenido por punción lumbar son los siguientes:

4 TOMA DE MUESTRA La recolección del LCR se realiza por punción cisternal o ventricular, pero la forma más frecuente es la función lumbar. El operador debe utilizar un equipo estéril y una técnica correcta. La recolección se realiza en tres tubos estériles, colocar a cada una de 2 a 3 ml uno de ellos deberá llevar anticoagulante, de preferencia heparina o EDTA, para prevenir una eventual coagulación.

5 ESTUDIO MACROSCÓPICO El estudio microscópico que consiste básicamente en observar las características físicas. El LCR normal es incoloro, de aspecto límpido, que no coagula. Muchas alteraciones patologicas pueden provocar cambios en las características físicas estos cambios pueden consistir: Aparición de color. Aparición de enturbiamiento Existencia de una red fibrosa. Presencia de coagulación.

6 MÉTODO QUÍMICO En un método colorimétrico que permite realizar una determinación cuantitativa Se basa en que las proteínas reaccionan con el reactivo de Biuter y forma un complejo de color violeta, el cual se mide en el espectrofotómetro.

7 GLOBULINAS son un grupo de proteínas, Su aumento patológico se dicta mediante el uso de prueba cuantitativa, como la prueba de Pandy, sensibilidad de estas pruebas permite reconocer una inflamación crónica o insipiente cuando todavía es normal la cifra total de proteínas.

8 El aumentos de las globulinas se produce sea por la alteración inflamatoria o degenerativa del sistema nervioso. Prueba de Pandy : Prueba sencilla, se basa en que las globulinas precipitan fácilmente en presencia de ácido fenico y forma un precipitado de color blanco. Reactivos : solución de pandy 10gr fenol ( ac. Fenico) |00 ml agua destilada Muestra : liquido cefalorraquídeo

9 PROCEDIMIENTO:

10 GLUCOSA La glucosa en LCR es de 50 -80 mg/dl en el adulto, en el niño de cifras son ligeramente superiores. La hipoglucorraquidea se define por glucosa inferior a 40 – mg/ dl causan son: la meningitis tuberculosa. La hiperglucorraquidea, se observa en la diabetes mellitus, otros estados de hiperglicemia, en la meningitis bacteriana, meningosica y neumocosica. La glucorraquidea se puede determinar mediante métodos colorimétricos, sean químicos, enzimáticos o cinéticos.

11 MÉTODO ENZIMÁTICO Es un método eficaz, sencillo y más exacto. Se basa en que la glucosa se oxida en presencia de una enzima, liberando peróxido de hidrogeno, medio en el cual se produce la unión oxidativa del fenol con la 4- aminofenazona y forma un compuesto de color. El que determina colorimétricamente.

12 Muestra: liquido cefalorraquídeo Reactivo: 1 solución enzimático 0.3 ml solución de GOD-POD; solución conteniendo glucosa oxidasa (GOD), peroxidasa (POD) 5 ml solución de fenol 5 ml solución de 4 AF(4-aminofenazona) 100ml agua destilada c.s.p. APARATO : espectrofotómetro

13 Procedimiento: Incubar 10 minutos en baño de agua a 37o C. Retirar los tubos y dejar en reposo 5 minutos. Luego leer en espectrofotómetro a 505 nm.llevando el aparato a cero con el blanco. B S D STANDAR - 20 UL - MUESTRA - - 20UL RACT1 2 ML

14 Cloruros : La concentración normal es 720 – 750 mg/dl expresados en cloruro de sodio. Estudio citológico: La ventaja de haber colocado anticoagulante en uno de los tubos reside a enviar una probable coagulación, que invalidaría el estudio celular. Recuento celular: la celularidad normal es menor a 4 células por mm. En los recién nacidos es menor de 10 células por mm. Destacando un predomino de linfocitos, sin la presencia de eritrocitos. El aumento de la célula recibe el nombre de pleocitos que pueden ser: Pleocitotis ligera de 10 -330 células mm Pleocitosis moderada de 30 – 100celula por mm Pleocitisis acentuada de 100 – 500 o más células por mm

15 El aumento de la célula recibe el nombre de pleocitos que pueden ser: Pleocitosis ligera de 10 -330 células mm Pleocitosis moderada de 30 – 100celula por mm Pleocitisis acentuada de 100 – 500 o más células por mm

16 Para realizar el recuento puede recurrirse al uso de diferente cámaras de recuento celular como la Neubauer, Fuch – Rosental. Muestra : líquido cefalorraquídeo Reactivos : liquido de dilución para glóbulos blancos Aparato : microscopio

17 PROCEDIMIENTO: Células mm= R1 x R2 x 1.1 2

18 RECUENTO DIFERENCIAL Es un estudio para determinar las siguientes tipos celulares hallados en el sedimento del líquido después de la centrifugación, y su proporción relativa. En el estudio de las células coloreadas revela que normalmente las células predominantes son los linfocitos. La linfocitosis es típica en procesos subagudos o crónicos, como en una mengitis tuberculosa y sifilica.

19 Muestra : liquido cefalorraquídeo Reactivos: solución de May Grunwald: contiene el colorante ániónico eosina y el colorante catiónico azul de metileno ambos disueltos en metanol. Solución de Giensa: contiene eosina, azul de metileno y una serie de productos de la oxidación Agua destilada tipo II APARATOS : microscopio óptico Centrifuga

20 PROCEDIMIENTO: Centrifugar el LCR durante 5 minutos a 2000 r.p.m. Descargar el sobrenadante Suspender e sedimento en una gota de LCR colocar una gota del sedimento en un porta objeto practicar un extendido dejar secar y fijar al calor colocar en la bandeja de coloración colocar el colorante de May – Gruenwald, dejar 3 minutos lavar con agua destilada y dejar en contacto 2 minutos descargar el agua y colocar el colorante de Giensa diluido, dejar 10 min. Lavar con agua Secar la lámina y observar en el microscopio Contar 100 elementos celulares Registrar.

21 CASO CLÍNICO Escolar de 9 años, sexo masculino, previamente sano, comienza con odinofagia y otalgia derecha cinco días antes de su ingreso. Consulta en urgencia donde se diagnostica otitis media aguda y se indica tratamiento sintomático con diclofenaco, sin antibióticos. Durante los días posteriores presenta mejoría leve.

22 La noche anterior a su ingreso comienza con fiebre de 39ºC axilar que cede con paracetamol. Evoluciona en pocas horas con cefalea frontal intensa y vómitos precedidos de náuseas en 3 ocasiones.

23 Consulta nuevamente en urgencia donde ingresa afebril, con signos meníngeos dudosos, comprometido de conciencia, Glasgow 10-11, con vómitos, sin compromiso hemodinámico. Se realiza punción lumbar (PL) que da salida a líquido cefalorraquídeo (LCR) turbio. Se toman 2 hemocultivos, se inicia tratamiento con dexametasona, cefotaxima, vancomicina y aciclovir y se solicita traslado a Unidad de Tratamiento Intensivo (UTI).

24 glucosa 31 leucocitos 1.340 monocitos 15% polimorfonucleares 85% glóbulos rojos 40 proteínas 20 mg/dl Hemograma: hematocrito 39% hemoglobina 12,6 gr/dl glóbulos blancos 17.900 baciliformes 11% segmentados 82% linfocitos 6% monocitos 1% plaquetas 317.000; VHS 101 mm/hora; entre de las pruebas de coagulación destaca dímero D 1.198 mg/ dl(Normal hasta 0.25) glicemia 172 mg/dl los gases arteriales revelan acidosis metabólica leve. Dentro de los exámenes de ingreso destaca PL:

25 El paciente ingresa a UTI comprometido de conciencia, con rigidez de nuca, babinsky bilateral, con mala perfusión distal y sin petequias. Se conecta a ventilación mecánica, se administra un bolo de solución fisiológica y dos de coloides, logrando estabilizarlo.

26 DIAGNOSTICO Meningoencefalitis Síndrome séptico

27 Evoluciona hemodinámicamente estable. Al segundo día se retira el ventilador mecánico y se obtiene resultado de cultivo de LCR con Streptococus pyogenes. Se agrega a tratamiento penicilina sódica al tercer día de hospitalización. Se realiza tomografía axial computada cerebral que descarta colecciones e hipertensión endocraneana. Evaluación de neurología descarta además encefalopatía. Se logra tipificar streptococo beta-hemolítico grupo A(en hemocultivo y cultivo LCR) por lo cual continúa Tratamiento sólo con penicilina sódica. La PL de control revela mejoría de los parámetros inflamatorios..

28 Al octavo día de hospitalización se traslada a la Unidad de Aislamiento y se inicia búsqueda de posible foco infeccioso primario como factor de riesgo para meningitis por Streptococus pyogenes. Evaluado por otorrinolaringólogo se diagnostica otitis media aguda derecha concomitante con compromiso de sistema nervioso central. Se mantiene el tratamiento antibiótico por 21 días y se da de alta al término de éste sin complicaciones con control ambulatorio posterior con neurólogos.