PRESENTADO POR: ANA MARIA SEQUEDA SEQUEDA. Paciente febril sin Foco de infección, de origen desconocido Estado de shock sin causas hemodinámicas Neumonía.

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1 PRESENTADO POR: ANA MARIA SEQUEDA SEQUEDA

2 Paciente febril sin Foco de infección, de origen desconocido Estado de shock sin causas hemodinámicas Neumonía nosocomial, pielonefritis, meningitis, infección abdominal, infecciones complicadas piel Leucopenia o leucocitosis no relacionada con enf. Hematológica Paciente inmunodepremido Paciente usuario de catéter venoso

3 Definición: Extracción de sangre con técnica aséptica para determinar la presencia de algún agente en la sangre a través de un cultivo de esta

4 Frascos de hemocultivo Jeringas de 10 cc (variable, dependiendo de cantidad de hemocultivos) Guantes estériles y de procedimiento Agua, jabón y papel desechable para lavar la zona de punción Tórulas grandes estériles Bolsa de desecho Riñón estéril Corto punzante Clorhexidina 2-4% Mascarilla (dependiendo de las normas del hospital) Liga

5 1.Revisión orden médica e identificar paciente correcto (brazalete) 2.Lavado de manos 3.Reunir material y llevarlo a la unidad del paciente 4.Solicitar un ayudante 5.Control de la temperatura del paciente 6.Valoración de vena a puncionar (periférica) 7.Lavado con agua y jabón de la zona a puncionar, secar con toalla desechable 8.Colocarse mascarilla (según norma) 9.Lavado de manos

6 10.Colocarse guantes estériles 11.Ayudante presenta material estéril 12.Operador arma jeringas y dejar en riñón estéril 13.Ayudante vierte clorhexidina 2-4% (Esperar a que el antiséptico se seque para que ejerza su acción residual) 14.Ayudante liga al paciente 10 cm sobre sitio de punción cuidando de no contaminar

7 16.Realiza punción venosa extrayendo la cantidad de sangre requerida 17.Ayudante suelta ligadura 18.Operador retira jeringa e inocula la sangre en el frasco de hemocultivo previamente aseptizado 19.Botar aguja en corto punzante y ordenar el resto del material

8 20.Ayudante controla sitio de punción y coloca tela si es necesario 21.Rotular frasco de hemocultivo (nombre del paciente, servicio y pieza del paciente completo, hora, T°, iniciales del operador) 22.Lavado de manos 23.Mantener botellas a T° amb y enviar rápidamente a laboratorio, nunca refrigerar) 21.Registro

9  Preparación de la piel es esencial para evitar contaminación de la muestra  Vaciar la muestra suavemente, evita la hemodiálisis, ya que podría interpretarse como hemocultivo +  Si requieren varios hemocultivos seriados, se deben tomar muestras de diferente punción  Si tiene que tomar varios exámenes, el hemocultivo debe ser la primera muestra.  Si no se logra obtener sangre en la 1era punción, debe cambiar la aguja  Volumen de muestra: 10 ml en adultos y variable en niños : Recién nacidos 1- 2ml, 1mes a dos años 2-3ml, mayores de 2 años3-5ml, adolescentes 10ml

10  Se ha comprobado que el mejor momento para obtener la muestra es 2-3 horas antes del síndrome febril, lo que es muy difícil de predecir. Para esto se recomienda obtener 3-4 muestras tomadas con un lapso de 30 minutos, en diferentes sitios de punción.  Las muestras deben obtenerse antes de la administración de ATB. Cuando el paciente ya esta recibiendo Antimicrobianos la probabilidad de aislar el agente disminuye  Sí el paciente está con antibioterapia, el hemocultivo debe tomarse antes de corresponder la siguiente dosis y consignarlo en la orden, medicamento, dosis, hora de administración de la última dosis.

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12 - En sangre es posible encontrar patógenos pertenecientes a los cuatro grupos principales BacteriasHongosParásitosVirus

13 EnterococcusProteus EscherichiaPseudomonas Klebsiella Staphylococcus aureus Staphylococcus sp. Streptococcus pneumoniae Streptococcus sp. Enterobacter Bacteroides Clostridium Bacteriemia: presencia de bacterias en la sangre de forma pasiva tras rotura del endotelio capilar. Puede ocurrir frecuentemente tras cepillado de dientes, relaciones sexuales, procedimientos dentales, etc. Los microorganismos no se multiplican en el torrente sanguíneo y son eliminados por los mecanismos de defensa. Septicemia o sepsis: las bacterias se multiplican en la sangre causando daño en el hospedador. Liberan toxinas.

14 ENFERMEDADES DE BASE Tumores Solidos Y Enfermedades Oncohematologicas. Diabetes Mellitus Cirrosis; Hemoglobinopatias Falla Renal Que Requiere Dialisis Sida; Colagenopatias Quemados, Ulceras Por Decubito Y Otras Enfermedades Que Alteran Las Barreras De Defensas MANIOBRAS TERAPEUTICAS Colocacion De Cateteres Cirugia (Especialmente Digestiva Y Del Tracto Genitourinario) Endoscopias MEDICACION Corticoides Drogas Citotoxicas EXTREMOS DE LA VIDA

15 Intravasculares: se originan dentro del sistema cardiovascular Extravasculares: se deben a la entrada de bacterias en la sangre provenientes de otro sitio de infección primaria, de ahí pasan al sistema linfático y de ahí a la sangre.  Estreptococos bucales: Streptococcus anginosus, S. sanguis, S. mutans, S. bovis  Staphylococcusepidermidis  S. aureus  Pseudomonas, enterobacterias  Haemophilus, Cardiobacterium, Eikenella  levaduras  Estreptococos bucales: Streptococcus anginosus, S. sanguis, S. mutans, S. bovis  Staphylococcusepidermidis  S. aureus  Pseudomonas, enterobacterias  Haemophilus, Cardiobacterium, Eikenella  levaduras Salmonella typhi (intestino delgado, ganglios linfáticos regionales del intestino) otras enterobacterias (tracto urinario)Pseudomonas Streptococcus pneumoniae (meninges, a veces pulmón), estreptococos β-hemolíticos (faringitis) S. aureus, Neisseria gonorrhoeae (infección genital) Neisseria meningitidis (meninges), Haemophilus influenzae tipo b (meninges, epiglotis, región periorbital), Brucella (sistema reticuloendotelial), Listeria (meninges), cocos anaerobios, Bacteroides, Clostridium, (tracto gastrointestinal) Salmonella typhi (intestino delgado, ganglios linfáticos regionales del intestino) otras enterobacterias (tracto urinario)Pseudomonas Streptococcus pneumoniae (meninges, a veces pulmón), estreptococos β-hemolíticos (faringitis) S. aureus, Neisseria gonorrhoeae (infección genital) Neisseria meningitidis (meninges), Haemophilus influenzae tipo b (meninges, epiglotis, región periorbital), Brucella (sistema reticuloendotelial), Listeria (meninges), cocos anaerobios, Bacteroides, Clostridium, (tracto gastrointestinal)

16  S.pneumoniae  N.meningitidis  H.influenzae  Brucella  Leptospira  S.pneumoniae  N.meningitidis  H.influenzae  Brucella  Leptospira INTRAHOSPITALARIA EXTRAHOSPITALARIA  S.Aureus  E.coli  P.aeruginosa  S.Aureus  E.coli  P.aeruginosa BACILOS GRAM NEGATIVOS NO FERMENTADORES  Enterobacter spp  Serratia spp  Providencia spp  Candida spp BACILOS GRAM NEGATIVOS NO FERMENTADORES  Enterobacter spp  Serratia spp  Providencia spp  Candida spp MIXTA

17 Volumen de muestra -La mayoría de las bacteriemias presentan número bajo de microorganismos -Adultos: 10 – 20 mL sangre (mínimo 10 mL) -Lactantes y niños pequeños: 1 – 5 mL -Número de hemocultivos: Si el volumen de sangre es adecuado, 2 ó 3 hemocultivos suelen ser suficientes Ritmo de recolección 2 ó 3 hemocultivos separados por una hora entre sí Pacientes graves (tratamiento inmediato): 40 mL en dos tomas simultáneas de 20 mL de dos sitios de punción venosa diferentes, con dos agujas y dos jeringas Evaluación inicial de fiebre de origen desconocido: 4 hemocultivos separados, 2 por día en 2 días diferentes

18 Volumen de muestra -La mayoría de las bacteriemias presentan número bajo de microorganismos -Adultos: 10 – 20 mL sangre (mínimo 10 mL) -Lactantes y niños pequeños: 1 – 5 mL -Número de hemocultivos: Si el volumen de sangre es adecuado, 2 ó 3 hemocultivos suelen ser suficientes Ritmo de recolección 2 ó 3 hemocultivos separados por una hora entre sí Pacientes graves (tratamiento inmediato): 40 mL en dos tomas simultáneas de 20 mL de dos sitios de punción venosa diferentes, con dos agujas y dos jeringas Evaluación inicial de fiebre de origen desconocido: 4 hemocultivos separados, 2 por día en 2 días diferentes

19 Sistema BACTEC (Benton Dickinson) Mide la producción de CO 2 métodos espectrofotométricos o fluorescencia Sistema Vital (BioMerieux) Mide emisión de fluorescencia en presencia de CO 2 Sistema BacT/Alert (Organon Teknika) Mide cambios de pH mediante un sensor colorimétrico Sistema ESP Culture System II (Trek Diagnostic System) Mide cambios en las presiones de los gases en el espacio muerto de los frascos

20 Mayor sensibilidad que los métodos convencionales. Rapidez en el diagnóstico ( 5 días) Disminución de riesgo biológico para el operador. Disminución de la contaminación Ahorro de trabajo (código de barras) Costo mayor que las botellas convencionales. Pueden suceder falsas alarmas, como positivos. Gérmenes especiales, a determinadas temperaturas. VENTAJAS DESVENTAJAS

21 TINCIÓN DE GRAM Permite Entregar Informe Preliminar En Las Bacteremias Acelerar El Inicio De Terapia Antibiotica Define El Tipo De Medio De Cultivo Adecuado Para Aislamiento SUBCULTIVOS COCOS GRAM(+) Y LEVADURAS Sembrar En Agar Sangre Agregar Microaerofilia En Mo. Exigencia BACILOS GRAM (-) Sembrar Agar Sangre y Mc Conckey Otros Mo. Fastidiosos Agregar Agar Chocolate -Agar de MacConckey (si se observan Gram negativas) -Agar sangre con suplementos para anaerobios - Agar chocolate

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