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Herpesviriosis en México: situación actual y perspectivas Rebeca Vásquez-Yeomans y Jorge Cáceres-Martínez ISA.

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Presentación del tema: "Herpesviriosis en México: situación actual y perspectivas Rebeca Vásquez-Yeomans y Jorge Cáceres-Martínez ISA."— Transcripción de la presentación:

1 Herpesviriosis en México: situación actual y perspectivas Rebeca Vásquez-Yeomans y Jorge Cáceres-Martínez ISA

2 Forma esférica poligonal, (icosaédrica) ADN lineal de doble cadena kpb 38% CG Características morfológicas del OsHV-1 NÚCLEO CÁPSIDE (116 nm) ENVOLTURA TEGUMENTO

3 Entre las especies donde se ha encontrado tenemos: Crassostrea virginica Crassostrea gigas Ostrea edulis Ostrea angasi Tiostrea chilensis Ruditapes philippinarum Pecten maximus Nodipecten subnodosus

4 Distribución global de Herpes virus

5 5 Causa mortalidad de hasta 100 % en cultivos de larvas y juveniles de ostión Eventos recurrentes, principalmente en verano CAUSAS: Compleja interacción de factores tales como: incremento de la temperatura, estrés fisiológico, malas prácticas y contaminantes, entre otros IFREMER

6 Signos de la enfermedad Larvas Reducción en actividad de nado y alimentación Lesiones en manto y velo Nado errático en círculos, deposición en el fondo Tomado de Renault y Novoa (2004)

7 Impacto en la Industria ostrícola Francesa Francia produce130,000 toneladas al año siendo el cuarto productor a nivel mundial después de China, Japón y Corea del Sur

8 Problema de graves consecuencias en Francia OsHV-1 µVar OsHV-1 A herpes virus has decimated oysters along Frances 5,500- kilometer coast for a fourth season

9 Vásquez-Yeomans, R., A. M. García-Ortega y J. A. Cáceres-Martínez. (2010) Gill erosion and herpesvirus in Crassostrea gigas cultured in Baja California, México. Diseases of Aquatic Organisms. 89: Vásquez Yeomans, R., J. A. Caceres Martinez y A. Figueras Huerta. (2004) Herpes-like virus associated with eroded gills of the Pacific oyster Crassostrea gigas in Mexico.. Journal of Shellfish Research. 23(2): Cáceres-Martínez, J. A. y R. Vásquez -Yeomans. (2003) Presence of giant polymorphic cells in Crassostrea gigas cultured in Bahia Falsa, Baja California NW Mexico. Journal of Shellfish Research. 22(3): Chávez Romero, Y. A., J. A. Cáceres -Martínez, R. Vásquez -Yeomans y A. M. García -Ortega. (2011) Genetic characterization of ostreid herpesvirus associated with mortalities of pacific oyster Crassostrea gigas in northwestern México. En 2011 International Malacology Reunion Del 27 al 30 de junio. La Paz, Baja California Sur, México. Western Society of Malacologists. Abstract. Estudios de herpes virus en México Cáceres-Martínez, J. A. y R. Vásquez -Yeomans. (2010) Presence of epibionts and herpesvirus in the lion-paw scallop Nodipecten subnodosus. En Aquaculture 2010 Del 01 al 05 de marzo. San Diego, California, Estados Unidos. World Aquaculture Society. Abstract.

10 Evidencias y validación ? b 6 Mortalidades Lesiones Alteraciones histológicas MET PCR- secuenciación HIS

11 Presencia del OsHV en Baja California AñoMes Localidad Estadio de desarrollo Mortalidad 2002AgostoBahía FalsaJuvenilSin datos 2005AgostoBahía FalsaJuvenilSin estimar 2006AbrilSan QuintínSemilla (20-30 mm)Sin estimar 2008SeptiembreSan QuintínAdulto ( mm)No 2008NoviembreBahía FalsaAdulto ( mm)No 2009JunioBahía de Todos SantosSemilla (3 mm)70% 2009JulioBahía FalsaSemilla (2-3 mm)97% 2009JulioBahía de Todos SantosSemilla (3 mm)40% 2009JulioLaguna ManuelaSemilla (20-37 mm)85-95% 2009AgostoBahía FalsaJuvenil (48-68 mm)Sin estimar 2009AgostoBahía FalsaSemilla (11-20 mm)Sin estimar 2009AgostoLaguna ManuelaJuvenil (26-52 mm)Sin estimar 2009NoviembreLaguna ManuelaSemilla (5-10 mm)Sin estimar 2009NoviembreLaguna ManuelaSemilla (5- 20 mm)Sin estimar 2009DiciembreBahía FalsaJuvenil (30-45 mm)Sin datos 2010EneroLaguna ManuelaSemilla (15-25 mm)70% 2010MarzoGuerrero NegroSemilla (25-35 mm)50% 2011JunioFlupsy – EnsenadaSemilla (2-5 mm)100% 2011JulioFlupsy – EnsenadaSemilla (8-10 mm)79% mm 73% (40-97%) Verano

12 Presencia del OsHV en Baja California Sur. AÑOMES LOCALIDAD ESTADIO DE DESARROLLO MORTALIDAD 2008NoviembreBahía TortugasJuvenil (50-60 mm)No 2008NoviembreBahía TortugasJuvenil (43-60 mm)No 2008DiciembreBahía TortugasJuvenil ( mm)Sin estimar 2008DiciembreBahía TortugasJuvenil (35-55 mm)Sin estimar 2009MarzoBahía TortugasAdulto (55-80 mm)Sin estimar 2009MarzoBahía TortugasAdulto (82-134)No 2009AbrilBahía TortugasSemilla (5-10 mm)Sin estimar mm.

13 Presencia del OsHV en Sonora. AÑOMESLOCALIDADESTADO DE DESARROLLOMORTALIDAD 2007EneroEl RiítoAdulto (74-90 mm)No 2007EneroEstero MorúaAdulto ( mm)No 2007MarzoBahía del TobariJuvenil (36-55 mm)80% 2007MarzoEstero MorúaAdulto (82-13 mm)No 2007MarzoBahía de KinoAdulto (83-90 mm)No 2007MarzoBahía de KinoSemilla (5-15 mm)75% 2007MayoEstero MorúaAdulto ( mm)No 2007NoviembreEstero MorúaAdulto ( mm)No 2008MarzoBahía San JorgeAdulto (65-92 mm)No 2008MarzoBahía de KinoJuvenil (27-40 mm)60-70% 2008MarzoBahía de KinoSemilla (15-20 mm)70% 2009AbrilBahía de KinoSemilla (15-20 mm)100% 2009AbrilEl RiítoAdulto ( mm)50% 2009MayoEl RiítoAdulto ( mm)Sin estimar 2009NoviembreEstero Los MélagosSemilla (10-15 mm)Sin estimar 2009NoviembreEstero La CinitaJuvenil (30-47 mm)No 5-55 mm 80% (60-100%) Primavera

14 Presencia del OsHV en Sonora. AÑOMESLOCALIDADESTADO DE DESARROLLOMORTALIDAD 2011MarzoEstero La CinaJuvenil (40-53 mm)Sin estimar 2011MarzoEstero La Santa CruzJuvenil (38-50 mm)Sin estimar

15 AÑOMESLOCALIDADESTADO DE DESARROLLOMORTALIDAD 2005MarzoBahía de AltataJuvenil (30-47 mm)70-80% Sinaloa 30 a 47 mm 75% (70-80%) Presencia del OsHV en Sinaloa. Sinaloa

16 Comparte características con el OsHV-1 y el OsHV µ var Cuatro o más variedades Mexicanas de OsHV-1 Detection of Oyster herpesvirus (OsHV) using PCR : M) 100bp Molecular marker (Invitrogen); Line 1) Positive control (Genomic viral DNA, 100 ng per reaction; Lines 2, 8) Negative control (sterile water). Lines 3 to 7 tissue samples. 100 pb 600 pb M M Tesis de Maestría de Yosef Amin Chávez Romero

17 Posible ciclo de acción viral en el ambiente Semilla No Si Zona de cultivo OSTIÓN portador OSTIÓN sano ESTRÉS MORTALIDAD Resistencia Si No MERCADO SiNo HERPESVIRUS ¿Infección? ¿Infectada? ¿Se mantiene en el ecosistema? Si No ¿Se mantiene en el ecosistema? SiNo

18 Hospedero Parásito Ambiente NE E INTERACCIÓN PARÁSITO-HOSPEDERO-AMBIENTE Estudio del hospedero Estudio del parásito-patógeno Estudio del ambiente Tríada de la enfermedad Triada de la enfermedad

19 Parásito Ambiente INTERACCIÓN PARÁSITO-HOSPEDERO-AMBIENTE-MANEJO Tétrada de la enfermedad Hospedero Manejo E NE Estudio:

20 20 RECOMENDACIONES 1.Evitar la introducción de moluscos bivalvos provenientes de zonas con antecedentes de mortalidad asociadas al OsHV-1 y OsHV-1 µVar y evitar la exportación de organismos provenientes de zonas con antecedentes de mortalidad asociadas al OsHV-1 y OsHV-1 µVar hacia zonas libres de herpesvirus para evitar su propagación 2.Después de la aparición del OsHV-1 µVar, nuevas variantes siguen emergiendo. El número de mutaciones depende del número de ciclos de replicación durante la fase infectiva del virus, por lo tanto, es sumamente importante controlar los eventos de mortalidad ya que estos favorecen la aparición de mutantes 3.Exigir y presentar certificados de sanidad en la comercialización de moluscos bivalvos 4.Vigilar el cumplimiento de las buenas prácticas de producción acuícola 5.Evitar la introducción de especies exóticas sin un estudio previo de carga parasitaria 6.Crear un programa de selección genética de organismos resistentes al OsHV-1 y OsHV µVar

21 Apoyo de: Dr. Miguel Ángel del Río Portilla (CICESE) Dra. Carmen Paniagua Chávez (CICESE) M.C. Mauricio García Ortega (ISA) Dr. Antonio Figueras (CSIC) Dr. Tristan Renault (IFREMER) Dra. Collen Burgen (Washington University) Dra. Carolyn Friedman (Washington University) Dr. James Moore (UC Davis) Tesistas: M.C. Yosef Amín Chávez Romero (CICESE) M.C. Jenniffer Villalva Vega (CICESE)

22 22 AGRADECIMIENTOS SUBNARGENA del CICESE

23 La investigación continua ¡Gracias!


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