TRANSFERENCIA DE MATERIAL GENÉTICO II: AISLAMIENTO DE PLÁSMIDOS

Presentación del tema: "TRANSFERENCIA DE MATERIAL GENÉTICO II: AISLAMIENTO DE PLÁSMIDOS"— Transcripción de la presentación:

1 TRANSFERENCIA DE MATERIAL GENÉTICO II: AISLAMIENTO DE PLÁSMIDOS
LISIS ALCALINA ENSAYOS DE RESTRICCIÓN

2 ESQUEMA GENERAL SESIÓN I: TRANSFORMAR cepas de E. coli con un plásmido para que adquieran resistencia a un antibiótico SESIÓN 2: AISLAR el plásmido mediante la técnica de Lisis alcalina SESIÓN 3: FUNCIÓN DE LAS ENZIMAS DE RESTRICCIÓN Cortar el plásmido aislado con enzimas de restricción y visualizarlo en un gel de agarosa teñido con bromuro de etidio

3 DNA genómico Forma el nucleoide. Es circular. Tiene entre 4000 a 5500 genes. Tiene un origen de replicación. DNA plasmídico Es DNA extracromosómico Circular Varían de tamaño Su replicación es independiente del DNA genómico Un origen de replicación único o múltiple. Una bacteria puede tener varios plásmidos diferentes. Le confieren características específicas como: resistencia, patogenecidad y prototrofía.

4 Superenrrollamiento de plásmidos

5 Tipos de enrollamiento
Linearizado: Cuando se cortan ambas cadenas de DNA sólo una vez. Parcialmente linearizado: Cuando se ha cortado sólo una de las cadenas. DNA relajado circular: DNA que no se ha empacado. Superenrrollado desnaturalizado: Covalentemente cerrado pero menos empacado que el superenrrollado. Superenrrollado: Covalentemente cerrado y muy empacado. Lineal Circular Superenrrollado

6 Las diferencias en el tamaño de DNA cromosomal y el DNA plasmídico permite desarrollar las diferentes técnicas de purificación. Plásmidos

7 Existen distintos procesos para la purificación de DNA plasmídico, pero todos incluyen tres pasos:
Crecimiento de bacterias en un medio selectivo de aquellas que llevan el plásmido. Lisis de las bacterias para la liberación del plásmido. Purificación del DNA plasmídico

8 2. Remover partículas grandes
Purificación de plásmidos Química Mecánica Cambios en la Tempratura 1. Lisis Centrifugación Filtración (uso de membranas) 2. Remover partículas grandes 3. Purificación intermedia Precipitación fraccionada Adsorción a membranas Métodos cromatográficos: Intercambio iónico Filtración en gel Afinidad 4. Purificación alta resolución Disolver Liofilizar Formular 5. Conservar

9 Lisis Alcalina Es la técnica más utilizada en el aislamiento de plásmidos circulares provenientes de células bacterianas Es una método simple, barato y reproducible

10 Lisis Alcalina Es una técnica que explota las diferencia en las propiedades de desnaturalización y renaturalización del DNA plasmídico (círculos cerrados covalentemente) y el DNA cromosómico (fragmentado). La alcalinización con NaOH en presencia de un detergente aniónico fuerte (SDS), que provoca la lisis celular, desnaturalización del DNA cromosómico y de las proteínas y la liberación del DNA plasmídico. Los plásmidos se ven poco afectados por su estructura circular y superenrrollada. La presencia de alta sal (acetato de potasio), permite la neutralización del medio y la precipitación de las proteínas y del DNA cromosómico. El DNA cromosómico y los agregados de proteínas insolubles se separan de el DNA plasmídico por centrifugación. El DNA plasmídico queda en el sobrenadante, conservando mayoritariamente su estructura nativa.

11 Extracción de DNA plasmídico de bacterias de E. coli transformadas.
Las bacterias se dejan crecer hasta una fase estacionaria

12 Recuperación y tratamiento de las bacterias transformadas
1 2 3 4 5 6 1.- Agregar cultivo de bacterias. 2.- Centrifugar. 3.- Descartar el sobrenadante. 4.- Drenar todo el medio de cultivo. 5.- Resuspender el pellet en solución GTE: (50mM Glucosa, 25mM Tris-HCl pH 8.0 y EDTA 10mM): La glucosa funciona como osmolito. EDTA debilita la membrana, uniéndose a cationes divalentes como Ca2* y Mg2*. 6.- Resuspender con pipeteo.

13 7.- Adicionar solución de lisis (NaOH 0.2 N y SDS 1%):
Lisis alcalina 7 8 9 10 7.- Adicionar solución de lisis (NaOH 0.2 N y SDS 1%): Ayuda a disolver los fosfolípidos de las membranas y los componentes proteicos. El NaOH desnaturaliza el DNA cromosomal y plasmídico. 8.- Incubar en hielo durante 5 minutos. 9.- Centrifugar. 10.- Transferir el sobrenadante. 11.- Descartar el pellet.

14 Neutralización y recuperación de DNA plasmídico
11 12 13 14 11.- Adicionar solución de Acetato de potasio 3M preenfriado: PRECIPITA EL SDS JUNTO CON PROTEÍNAS Y LÍPIDOS 12.- Incubar en hielo durante 5 minutos. 13.- Centrifugar. 14.- Transferir el sobrenadante. 15.- Descartar el pellet. El DNA cromosomal neutralizado, se precipita junto con el SDS, las proteínas y los lípidos. El DNA plasmídico y el RNA no se precipitan, por lo que SE MANTIENEN EN EL SOBRENADANTE.

15 Precipitación del DNA plasmídico
15 15.- adicionar Isopropanol: El isopropanol nos permite precipitar en DNA plasmídico. 16 17 19 20 18.- Adicionar etanol 70%: ESTE PASO INTERMEDIO NOS PERMITE ELIMINAR LAS SALES SDS Y EL ISOPROPANOL (LA MEZCLA ISOPROPANOL-ETANOL SE EVAPORA CON MAYOR RAPIDEZ) 18 16.- Centrifugar. 17.- Descartar el sobrenadante. 19.- Drenar el líquido restante (Ser cuidadoso porque se puede ir la pastilla). 20.- Incubar 5 minutos a TA, o hasta que la muestra este seca.

16 Verificación de la purificación
Para monitorear el progreso de la purificación del plásmido, y verificar la correcta purificación, se llevan a cabo dos técnicas principalmente: 1.- Absorbancia a 260 nm 2.- Electroforesis en geles de Agarosa

17 Absorbancia a 260 nm Contaminantes:

18 Electroforesis en geles de Agarosa

19 Monitoreo de purificación mediante distintas técnicas:
Electroforesis en geles de Agarosa 1 Precipitación con isopropanol 2 Cromatografía intercambío aniónico 3 Filtración con membrana de nitrocelulosa 4 Lo que se retuvo en la membrana de nitrocelulosa DNA cromosomal Plásmido abierto

20 ESQUEMA GENERAL SESIÓN I: TRANSFORMAR cepas de E. coli con un plásmido para que adquieran resistencia a un antibiótico SESIÓN 2: AISLAR el plásmido mediante la técnica de Lisis alcalina SESIÓN 3: FUNCIóN DE LAS ENZIMAS DE RESTRICCIÓN Cortar el plásmido aislado con enzimas de restricción y visualizarlo en un gel de agarosa teñido con bromuro de etidio

21 Los plásmidos tienen: Un origen de replicación: Le permite hacer copias de si mismo (replicarse), independientemente del cromosoma hospedero. Marcadores de selección: Contiene un gen que le confiere resistencia a algún antibiótico (generalmente), permitiendo aislar las células que nos sean de interés. Sitio de clonación múltiple: Son sitios de secuencia repetida, conocidos como sitios de restricción. Se encuentran en regiones no esenciales y le permiten al plásmido abrirse para insertar el DNA.

22 Enzimas de restricción
Las nucleasas o fosfodiesterasas son enzimas que catalizan la hidrólisis de los enlaces fosfodiéster. Existen varias nucleasas como: Exonucleasas: Cortan en el último nucleótido. Endonucleasas: Cataliza la ruptura de enlaces fosfodiester en los nucleótidos del interior de un polinucleótido. Ribonucleasas: Son enzimas específicas para ruptura de RNA. Desoxirribonucleasas: Enzimas específicas para ruptura de DNA.

23 Enzimas de restricción
Las enzimas de restricción son endonucleasas que cortan DNA viral en fragmentos pequeños, convirtiéndolos en no funcionales, de esta manera la bacteria evita la invasión del bacteriófago (defensa). Para evitar cortar el propio DNA de la bacteria, se llevan a cabo modificaciones en su DNA, como metilaciones. Se les denomina enzimas de restricción, porque restringen la invasión del bacteriófago.

24 Existen varios tipos de enzimas de restricción.
Los tipos I y III: Tienen capacidad de restricción y de metilación. Reconocen regiones grandes y asimétricas. Cortan en un sitio diferente al de reconocimiento: Tipo I: Cortan a una distancia grande de la secuencia de reconocimiento, en sitios al azar, ya sea río arriba o río abajo. La enzima que reconoce el sitio de restricción posee 3 subunidades. Tipo III: Cortan en 5 a 8 pares después del sitio de reconocimiento.

25 Características de los diferentes tipos de enzimas de restricción

26 Enzimas de restricción tipo II:
Este tipo de enzimas de restricción que únicamente cortan, no metilan. Son endonucleasas (no todas son enzimas de restricción). La restricción ocurre en el sitio de reconocimiento. Cortan enlaces fosfodiéster en sitios de secuencias específicas de 4 a 8 nucleótidos que reconocen y que se denominan sitios de restricción o secuencias de reconocimiento. Reconocen secuencias en el DNA palindrómicas (que se leen igual de ambas direcciones) Son usadas en Biología molecular, porque permiten romper en sitios específicos.

27 Reconocimiento y Corte de las enzimas de restricción

28 Los cortes de las enzimas de restricción se dividen en dos tipos de acuerdo a su sitio de corte en la doble cadena de DNA: Extremos cohesivos Extremos romos

29 Extremos romos Se generan cuando la enzima corta las dos cadenas en el mismo lugar, generando dos extremos con doble cadena.

30 Extremos cohesivos Se generan cuando la enzima corta las dos hebras asimétricamente, dejando los dos extremos en cadena simple, complementarios entre sí .

31 Sitios de restricción útiles en la clonación
En Biología molecular los sitios de restricción son útiles para la clonación de genes de interés. Estos extremos deben de ser una secuencia conocida, que el gen de interés tenga en su secuencia.

32 Enzimas de restricción usadas en Biología molecular

33 Nomenclatura de las enzimas de restricción
Las enzimas de restricción se nombran de acuerdo al organismo del cuál provienen y sus características. Nombre: Eco RI E Escherichia Género co coli Especie R RY Cepa bacteriana I Corresponde a la primera Número de identificación enzima identificada

34

35 Aislamiento de plásmido mediante Lisis alcalina
En la práctica: Aislamiento de plásmido mediante Lisis alcalina Objetivos: Conocer los fundamentos para la purificación del DNA plasmídico y su separación del DNA genómico. Realizar el aislamiento del DNA plasmídico.

36 Obtención del plásmido mediante lisis alcalina
Bacterias E. coli transformadas

37

38 Ensayos de restricción de plásmido
En la práctica: Ensayos de restricción de plásmido Objetivos: Conocer el principio de separación y detección de ácidos nucleicos en geles de agarosa. Emplear electroforesis en geles de agarosa para visualizar ácidos nucleicos. Determinar el tamaño de fragmentos de ácidos nucleicos separados en geles de agarosa. Conocer la utilidad de las enzimas de restricción en la transformación genética y la biotecnología.

39 Bacterias E. coli transformadas

40