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Publicada pordaniela ammaya Modificado hace 7 años
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Examen Coproparasitoscópico María del Mar Rojas Paredes- 66413069 Kelly Daniela Amaya Suarez -66413096 Carlos Arturo Sánchez Reyes -66413554 Erika Johana Moreno Pabon -66414009 Carlos Nicolas Aleman Gualdròn-66414506 Guillermo Alexander Ciendua -66415077 Laura Stephany Lopez Niño -66415592
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Realiza un examen Coproparasitoscópico (cps), a una muestra de heces con el fin de buscar e identificar formas parasitarias. Generalidades Las muestras fecales son seriadas con un mínimo de tres y deben colocarse en frascos de boca ancha, guardados en lugares frescos, mientras se analizan, pues con el calor se aceleran los fenómenos de degradación por bacterias y con el frío se pueden destruir los quistes y trofozoítos de protozoos Los métodos químicos permiten la conservación durante un tiempo más prolongado, sin correr el riesgo de que los parásitos se deformen o se destruyan, por ejemplo con soluciones que contienen formol, yodo- mertiolate, etc
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CLASIFICACIÓN ClasificaciónCualitativos que formas parasitarias existen 2 tipos: los métodos de concentración el examen directoEn búsqueda de: trofozoitos, quistes, huevecillos y larvas. Cuantitativos El numero que se encuentran Se utilizan sobre todo en las helmintiasis
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Indicacion y solicitud PROCEDIMIENTO PARA OBTENER LA MUESTRA preparacion del paciente obtener muestra fecal para el examen EXAMEN COPROLOGICO DIRECTO examen macroscopico directo (heces liquidas,blandas o oscuras ) examen microscopico (leucocitos,eritrocitos,restos de alimentos origen vegetal o animal,levaduras ) CONSERVACION Y ENVIO DE MUESTRAS FECALESRefrigeracion preparacion sellada en porta -objetos reactivo de MIF (merthiolate,iodo,formol) reactivo de PVA (alcohol polivinilico) Procedimientos de obtención y manejo de materia fecal
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Conservación y envió de las muestras fecales A)REFRIGERACION ; -el frasco debe colocarse en el refrigerador a 4ºC -Cuando la conservación debe hacerse unas horas o un día -método mas sencillo y practico B) PREPARACIÓN SELLADA EN PORTA OBJETOS -vaselina o barniz de uñas (aplicar en el borde del cubre objetos -Método de doble laminilla ( cubrir la muestra con una laminilla pequeña la cual se aplico bálsamo) C )FORMOL -aplicar en 3g de materia fecal 10 ml de formol diluido 5 a 10 % (utilidad; evita la descomposición, disminuye el olor y fija los parásitos ) D)REACTIVO DE MIF (merthiolate, iodo,formol,) -doble utilidad (fija parásitos y los colorea) -conservación en frasco o en porta objetos (se coloca 1g de heces frescas en un frasco y 10ml de MIF,se mezcla con un aplicador.este puede preservarse por un año. E) REACTIVO DE PVA( ALCOHOL POLIVINILICO) -nombres comerciales ELVANOL o GELVATOL -bueno para preservar trofozoítos y quistes (conservan su morfología por mucho tiempo)
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EXAMEN MACROSCOPICO 1)CANTIDAD80 a 200g 2) FORMApuroide (cilindrica ) escíbalos(aglomeraciones esfericas) deposición caprina (pequeñas y numerosas) laminada o de cinta 3)CONSISTENCIAduras pastosas fluidas intermedias 4)VISCOSIDADviscosas (pastosas) poco viscosas grasas 5)OLORinodoro(meconio) aumentado(comidas ricas en carne y pescado) debil(dieta vegetariana y lactea) ligeramente agria(niño en pecho) putrido(olor amoniaco, HECES ALCALINAS Y GASES agrio penetrante rancio (heces acidas y gases) Nauseabundo (descomposición de tejido, cáncer ulcerado del recto) 6) RESTOS ALIMENTICIOSrestos vegetales proteicos grasas 7) REACCIONacida(dispepsia de fermentacion, y esprue. Transito rapido cecal) alcalina(insuficiencia gástrica y pancreática y gástrica) 8 )COLORmarron (NORMAL) verde (ingesta de alimentos verduras y medicamentos) rojo ( hemorragias proximal al ano) negro (morcilla,sangre,medicamentos ;carbon,hierro, bismuto) blanco (acolia o hipocolia,seudocolia) amarillo (diarreas de fermentacion hidrocarbonada )
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EXAMEN MICROSCOPICO SHIGELOSIS 1:LEUCOCITOSPOLIMORFONUCLEARESSALMONELOSIS FIEBRE TIFOIDEA ESCHERICHIA COLI MONONUACLERESFIEBRE TIFOIDEA 2.-ERITROCITOSHEMORRAGIA DE COLON HEMORROIDES SINDROME DISENTERICO 3.-CRISTALES DE CHARCOT-LEYDEN10 A 30 MICRAS DESINTEGRACION DE EOSINOFILOS ASOCIDO A PROCESOS ALERGICOS 4.-RESTOS DE ALIMENTOSALMIDONES CELULAS Y FIBRAS VEGETALES 5.-RESTOS DE ORIGEN ANIMALGRASAS FIBRAS MUSCULARES 6.-FLORA BACTERIANABACILOS CORTOS 7.-ELEMENTOS NO PARASITARIOSGRANULOS DE ALMIDON GOTAS DE ACEITE CELULAS ANIMALES CELULAS VEGETALES POLEN LEVADURAS
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Métodos de concentración
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Técnica de Ritchie o centrifugación con formol - éter Concentra quistes de protozoos, huevos y larvas de helmintos Ventajas del uso de eter y formol
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Técnica de Faust o de flotación con sulfato de zinc Utiliza medio liquido mas pesado que los parásitos Concentra quistes, huevos y larvas Desventaja: poco eficaz para Taenia spp., F. hepatica y óvulos de A. lumricoides
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Técnica de flotación por Sheather Técnica de Willis - Molloy NaCl Para huevos de uncinaria e Hymenolepsis Separa, concentra y recobra ooquistes de Isospora, Cryptosporidium y Cyclospora. Solución densa de azúcar
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Técnica de Ritchie o centrifugación con formol - éter Concentra quistes de protozoos, huevos y larvas de helmintos Ventajas del uso de eter y formol
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Técnica de Faust o de flotación con sulfato de zinc Utiliza medio liquido mas pesado que los parásitos Concentra quistes, huevos y larvas Desventaja: poco eficaz para Taenia spp., F. hepatica y óvulos de A. lumricoides
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COPROGRAMA Estudio de la materia fecal que incluye el estudio microscópico y un análisis bioquímico: –pH. Normal 7.0 Diarrea por bacterias invasivas: <6, acido. Diarrea de origen toxico: neutro Diarreas virales: acido Diarreas por intolerancia a la lactosa: <5, acido –La medida del pH no es valida en pacientes que estén tomando antibióticos orales. –Azucares reductores. Glucosa, lactosa. Detectados con el reactivo Benedict o Clinitest. Diarrea de origen bacteriano toxico: glucosa (+), lactosa (-) Diarreas virales: glucosa (-), lactosa (+) Diarreas inespecíficas: las dos pruebas negativas –Sangre oculta –Prueba para hemoglobina humana
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METODO DE RECUENTO DE HUEVOS Métodos útiles para saber aproximadamente la intensidad de la infección por ciertos helmintos. – Ascariasis, tricocefalosis, uncinariasis, himenolepiasis y esquistosomiasis. Se basan en la cuantificación del numero de huevos por gramo de materias fecales (h.p.g.) Permiten clasificar en leves, medianas e intensas a las helmintiasis mencionadas.
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Recuento en placa microscópica Técnica de Kato Katz Técnica de Stoll- Hausheer
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COLORACIÓN. Protozoos Intestinales: – Con estos se obtienen detalles morfológicos mas exactos. – Para la docencia – Para archivo – Remitir para confirmación de Dx.
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TECNICA CON HEMATOXILINA FERRICA DE HEIDENHAIN Protozoos intestinales (amibas) Morfología nuclear REACCIVOS: – Fijador de Scchaudinn – Alcohol iodado – Mordiente – FeNH4(SO4)2-12H2O
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TECNICA DE COLORACION TRICOMICA. Coloración de los protozoos Citoplasma: Azul verdoso Cuerpos cromatoidales, los eritrocitos y las bacterias: rojo o purpura Fondo: verde. Huevos y larvas: rojo REACTIVOS: – Fijador: Schaudinn oPVA – Colorantes tricomico: 1.Cromotropi 2 R 2.Verde claro 2R 3.Verde brillante FCF 4.Acido fosfotungstico 5.Acido acético glacial 6.Agua destilada 7.Acido acético REACTIVOS: – Fijador: Schaudinn oPVA – Colorantes tricomico: 1.Cromotropi 2 R 2.Verde claro 2R 3.Verde brillante FCF 4.Acido fosfotungstico 5.Acido acético glacial 6.Agua destilada 7.Acido acético
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COLORACION DE ZIEHL – NEELSEN MODIFICADA Para Ooquistes: rojo brillante. Fondo: verde. Son redondeados y ovalados de 3 -5 micras de diámetro, en algunos se logra ver los corpúsculos internos teñidos mas oscuros que corresponden a los esporozoitos. cryptosporidium Cyclospora Isospora
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Weber Material fecal y aspirado duodenal COLORACION TRICROMICA MODIFICADA PARA MICROSPORIDIOS REACTIVOS : Colorante de comotropo 1.Cromotropo 2R 2.Fast green 3.Acido fosfotungstico 4.Acido acético 5.Alcohol acido
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Gracias
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