Herramientas III: Diagnóstico para la eliminación

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Transcripción de la presentación:

Herramientas III: Diagnóstico para la eliminación Andres Vallejo, Ph.D. Curso de actualización para la Eliminación de la Malaria en Mesoamérica y La Española 16 – 21 de febrero de 2014 San Salvador, El Salvador

Papel de la Investigación en control/eliminacion de malaria Investigacion basica y aplicada Cambio de politicas Implementacion en el programa Vigilancia, monitoreo & evaluacion

ICEMRs en el Mundo

ICEMR Latinoamerica Proyecto #1 MALARIA EPIDEMIOLOGIA Proyecto #2 VECTOR BIOLOGY AND IVM Proyecto #3 IMMUNOLOGY AND PATHOGENESIS Generar conocimiento tecnico y cientifico para el control/eliminacion de la malaria a gobiernos de Colombia, Peru, Panama, Guatemala, asi como Ecuador y Honduras

Herramientas de diagnostico Microscopia QC/QA PDR Aplicabilidad RT-qPCR and LAMP Sensibilidad

Microscopia Cuantifica parásitos Permite la Diferenciación de especies Pero … Altamente dependiente del operador Limite de detección variable

PDR– Un problema del sistema de salud 100% Poor manufacture Crowded, donor-driven market Long supply lines, no temperature control Poor transport and storage Poor preparation Poor interpretation Remote, poorly-supplied clinics Poor use of results Negative impact D. Bell

Evaluación de un dispositivo para lectura automatizada de PDR

Fionet Conecta la Atención en Salud y la Captura de Información Interpretación certera y automatizada de PDRs Equipos y algoritmos originaless de interpretación automatizan la lectura de PDRs Provee la identificación y procesamiento correctos de la PDR Interpreta múltiples PDRs de distintas enfermedades y casas comerciales Facilita el seguimiento de las guías de manejo Conduce paso a paso al trabajor de salud ien los procedimientos Facilita remotamente la intervención oportuna de correctivos y alertas por parte de los supervisores Captura de Información automatizada, completa, certera y oportuna Interfaz de usuario simple, permite entrada de datos fácil, veloz y sin errores Mantiene inventario de usuarios, instituciones, fecha y hora, y geo- posicionamiento Transmite toda la información al final de la sesión a la nube de Informática de Fio Resuelve Diagnósticos erróneos con PDRs Poca adherencia a guías de manejo Deficiencias en reporte

Validacion en campo de un dispositivo para lectura de PDR Pf/Pv. Vigilacia pasiva en febriles Augosto 2011 a Enero 2012 Diagnostico de Malaria PDR Microscopia RT-PCR Gold Standard Microscopia corregida por PCR PCR El desempeño del Deki Reader fue comparable a la interpretacion visual de PDRs (concordancia >98%) para las dos especies. Requiere conectividad celular estable. Herrera, et al. Malaria Journal,2014 (In Press)

Desarrollo de un kit LAMP para Pan/Pf Extracción de DNA Boil&Spin – 60 ul sangre (~10 min) PURE – 35 ul sangre Otros Tubos de reacción termoestables Amplificación y détection (65°C – 40 min) (-) (+) Turbidimetría Loopamp LF-160

LAMP: Amplificación isotérmica mediada por bucles Caracteristicas: Alta especificidad (uso de 6 primers) Rápida (15 – 60 minutos) Isotérmica (DNA polmerasa) Detección Visual (Turbidez o Fluorescencia) Sistema cerrado Robusta (Métodos simples) http://loopamp.eiken.co.jp/e/lamp/anim.html

Resultados Validación en Laboratorio 150 muestras colectadas previamente, (100 positivas, 50 Negativas) Realizado en el Laboratorio central en Cali

Validación en campo Estudio de vigilancia pasiva en pacientes febriles Secretaria de Salud de Tierralta Microscopia LAMP desarrollado por bacterióloga con 3 días de entrenamiento Registro de resultados en base de datos en Línea (RedCap) Estudio ciego Pacientes febriles que acudan en busca de diagnostico de malaria (n=297)

Validación en campo Prevalencia General de 31,8 % para Plasmodium, sobre pacientes febriles en Tierralta Cordoba

Validación en campo LAMP logro detectar 18% mas casos de malaria que GG. Se encuentran 4/217 (1,8%) discrepancias entre LAMP y PCR en tiempo real. Las diferencias entre LAMP y PCR se encuentran en muestras de bajas parasitemias (<50p/ul) y solamente en casos de P.vivax.

Estudios de campo– LAMP kit Country Institution Population Sites Cambodia Pasteur Institute of Cambodia Symptomatics and asymptomatics 1 province Zanzibar Karolinska Institute 1 district Colombia Caucaseco Scientific Research Center P. vivax detection 4 site Swaziland, Namibia, Malaysia UCSF Reactive Case Detection Several

Malaria Survillance Asymptomatic How big is the hippo? Submicroscopic No diagnosis access Asymptomatic Identified and Cured Poor adherence How big is the hippo? Proportion of infections identified ACD vs PCD Appropriate treatment Adherence to treatment Drug efficacy Solo vemos los ojos del Hipopotamos, no sabemos que tan grande es

Deteccion de infecciones sub-microscopicas Meta-analysis of 72 studies of microscopy vs PCR: Microscopy miss 25.5% and 88% of infections in high and low transmission areas respectively. Gametocyte infectivity Okell et al JID 2009 Molecular tests could contribute in identifying pockets of transmission to treat infections and accelerate the interruption of transmission. Bousema and Drakeley 2011

¿Que tan importantes son los pacientes asintomaticos?

Infectivity to mosquitoes Pilot transmissibility study Buenaventura 1.Cross sectional survey 2. PCR diagnosis 3. Follow-up (7 Days) 4. Xenodiagnostics MEASURING MOSQUITOES INFECTIVITY 7 Days post feeding. 14 days post feeding.

Infectivity to mosquitoes TBS RT-PCR Parasitemia density and maturation [Density] Gametocyte Maturation Asymptomatics Clinical Trial Pre-immune Naive Volunteers N 14 9 7 Mean Parasitemia (p/ul) 14.4 (SD 26) 174 (SD 73) 553 (SD 129) Xeno-Dx Positive 8 Mean Infectivity (%) 57

Diagnostico PCR prevalence 6.4 % Overall prevalence TBS ~1% La incidencia de Malaria esta sub estimada y presenta heterogeneidad a nivel de areas endemicas PCR prevalence 6.4 % Overall prevalence TBS ~1%

¿Que tan lejos estamos de usar herramientas moleculares en campo?

Técnicas moleculares: Del laboratorio al campo Amplification and detection (65°C – 40 min) (-) (+) Loopamp LF-160 *Red Circles represents patients from the same Home. LAMP fue usado en estudios de corte transversal en 10 localidades de Colombia como tecnica molecular de diagnostico en campo. Bajo estas condiciones , LAMP detectó 23% mas casos que PCR (desde papel filtro), y 15 veces mas casos que microscopia.

Spatial analysis Identification of transmission sites: House level Malaria transmission remains heterogenous and Identification and targeting high transmission foci within a village will be key.

Spatial analysis Identification of transmission sites: House level Focal screening (FS) Screen surrounding houses with very sensitive test to detect asymptomatic cases Eliminate all malaria cases in area

PCD vs ACD Cases stratification Cost and Logistics ACD complements the identification and treatment of PCD decreases time symptoms onset and treatment. Opportune treatment reduces infectivity to mosquito. Routine timely data analysis will allow early detection of malaria outbreaks.

Resumen Sensibilidad y especificidad similares a PCR en pacientes agudos. LAMP detecto 18% mas casos que Microscopia en pacientes febriles. En estudios de busqueda activa, detecto 15 veces mas casos que Microscopia.

Métodos de diagnóstico en diferentes condiciones endémicas 100,000 ― 10 ― 1,000 ― 100 ― 1 ― 10,000 ― Parasitemia Elimination Baja transmision Alta transmisión Manejo de Caso Tamizaje para eliminar infecciones asintomáticos RDTs microscopia en campo Microscopia en lab. referencia PCR / LAMP D. Bell

Diagnostic needs: Elimination vs. Case Mgt Diagnostic requirements: Stratification (good surveillance and/or new survey tools) Routine management, good surveillance Highly sensitive field screening tools Screening for re-introduction Okavango Sub-District Zone A Ch ob e Su b- D istr ic t Zone A N.E Distr ict Zone B N Nga mi S ub- District Zone A Tutume Sub-District Zone A F/town Zone B S/Phikwe Zone B Bobirwa Zone B W E Boteti Sub-District Zone A Gantsi District Zone B S Ser-Pal Zone B Mahala pye Zone B Zone C Zone C Zone C Zone C 5. Capacity to manage these within a country programme Epidemiological Distribution of Malaria in Botswana

¿ A donde nos llevan las nuevas tecnologías y a que costo ? Limite Tecnológico de detección. Densidad de Parasitos detectada PDR 100 Detección de Ácidos Nucleicos 50 Area gris para la Tamizaje para eliminacion Cost (investment)

P.falciparum Barcoding N Obaldia et al., 2014 Harvard U

Talleres regionales de entrenamiento Colombia, APC-Colombia, Caucaseco Vectors en Eliminacion de Malaria Elimination Honduras: Pais: Honduras Fecha :February 24-26 Partners: Cacuaseco, National University of Colombia. Diagnostico para diagnostioco en Elimination Pais: Guatemala Fecha : April 2-4 Partners: Cacuaseco,National Institute of Health/Colombia, FIND Mapas de riesgo y sistemas de informacion Pais : Panama Fecha : Junio 9-11 Partners: Cacuaseco, Miami University, Georgia University.

Conclusiones y Recomendaciones I La detección pasiva y activa de casos clínicos debe continuar basada en microscopía y pruebas rápidas de calidad asegurada. Todas las infecciones, sintomáticas y asintomáticas, deben considerarse como posible fuente de transmisión y por lo tanto deben ser detectadas y tratadas. La detección activa de infecciones asintomáticas debe hacerse con pruebas diagnósticas capaces de detectar parasitemias sub-microscópicas (pruebas moleculares).

Conclusiones y Recomendaciones II La detección de casos clínicos por microscopía o pruebas rápidas debe permitir la identificación de focos de transmisión en los cuales se pueda hacer diagnóstico y tratamiento masivo focalizado basado en pruebas moleculares. Los programas de control de malaria deben incluir dentro de su políticas, el tratamiento radical de infecciones detectadas por métodos moleculares. El nivel del sistema de salud para el uso de las pruebas moleculares debe ser lo suficientemente cerca de la población para permitir el tratamiento oportuno de infecciones y evitar la perdida de casos.

Conclusiones y Recomendaciones III Deben desarrollarse mecanismos de control de calidad y de equivalencia para los diferentes métodos moleculares existentes. Las pruebas moleculares deben ser un complemento y no un reemplazo para las otras estrategias para la eliminación (control de vectores, uso de mosquiteros impregnados, etc.). Se necesita más investigación para entender la utilidad y costo-efectividad de las pruebas moleculares para acelerar la eliminación de la malaria.