Capítulo 2. Técnica histológica y sus aplicaciones.

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1 Capítulo 2. Técnica histológica y sus aplicaciones

2 Figura 2-1. Resalta en esta imagen las diferencias que la tinción de hematoxilina y eosina permite identificar: núcleos en morado y citoplasma en rosa (páncreas).

3 Figura 2-2. La técnica tricrómico de Masson identifica el tejido conjuntivo (colágeno) en color azul, los núcleos en negro y la queratina en rojo (piel de axila).

4 Figura 2-3. En este corte de tendón, la técnica de tricrómico de Gallego tiñe al colágeno de verde y los núcleos en azul-negro.

5 Figura 2-4. La técnica de tricrómico de Gomori da el colágeno en verde-azul, los núcleos en azul o negro, las células β del páncreas, rosa y los eritrocitos en color naranja (páncreas).

6 identificación en la capa media.
Figura 2-5. Las fibras elásticas resaltan en color negro con la tinción de Verhoeff. En esta arteria elástica (aorta) es muy notoria su identificación en la capa media.

7 Figura 2-6. Con la tinción de Mallory el tejido conjuntivo se ilumina en tonos de azul, de igual manera que el cartílago (pulmón).

8 Figura 2-7. Cuando se aplica la técnica de Gros-Bielschowsky se observan los axones en negro-rojizo y las neurofibrillas en negro (nervio periférico).

9 Figura 2-8. La técnica Río-Hortega tiñe las neurofibrillas y cuerpos
neuronales en negro (corteza cerebral).

10 Figura 2-9. Con la tinción de Grimelius, las células del sistema neuroendocrino difuso resaltan en color negro (intestino).

11 Figura En esta imagen de corteza cerebral, las fibras nerviosas se ven negras y el resto en color café.

12 Figura Con la técnica de Gordon-Sweet en hígado, las fibras reticulares se marcan en color negro.

13 Figura 2-12. La técnica con Luxol tiñe mielina en azul y cuerpos
neuronales en rosa.

14 Figura Con la técnica de Nissl los cuerpos neuronales y la mielina se tiñen de azul (médula espinal).

15 Figura La técnica de Kluver Barrera muestra mielina en azul y las otras estructuras en rosa o morado (corteza cerebral).

16 Figura 2-15. La glándula sublingual marca en rosa las mucosustancias
de sus ácinos mucosos.

17 Figura Otra tinción para mucosustancias ácidas es la técnica de azul alciano pH 2.5, lo que es muy notorio en este corte de estómago.

18 Figura 2-17. Cuando el pH es de 1, las mucosustancias más sulfatadas
se tiñen de azul (estómago).

19 Figura Con la tinción de Wright, en la sangre se pueden identificar los leucocitos, como en esta imagen en la que se aprecia un linfocito y un eosinófi lo con sus gránulos rojizos.

20 Figura Cuando se quiere identificar la presencia de hemosiderina se recurre al método de Perls, que la tiñe en azul (coágulo en la luz de un vaso).

21 los núcleos se tiñen de rojo (melanoma).
Figura En el caso de la melanina, la tinción de Fontana Masson la tiñe en negro, como es el caso del tejido aquí observado; los núcleos se tiñen de rojo (melanoma).

22 Figura La lipofuscina en miocardio se identifica con facilidad utilizando la técnica de PAS, que la hace ver rojo-magenta (corazón).

23 Figura 2-22. La belleza de los cromosomas en movimiento se
identifica de forma maravillosa con la técnica de Feulgen (raíz de lirio).

24 Figura A fin de identificar a los bacilos ácido-alcohol resistentes en el pulmón, se emplea la técnica de Ziehl-Neelsen que los tiñe de rojo (pulmón).

25 Figura 2-24. Para identificar hongos, la técnica de Grocott los
resalta en color negro (pulmón).