TECNICAS DE BIOLOGIA MOLECULAR

Presentación del tema: "TECNICAS DE BIOLOGIA MOLECULAR"— Transcripción de la presentación:

1 TECNICAS DE BIOLOGIA MOLECULAR
Química Biológica Patológica TECNICAS DE BIOLOGIA MOLECULAR Aplicadas al diagnóstico de Enfermedades Genéticas III- Parte Tema:1 (1)  Dra. Silvia Varas

2 GENERALIDADES

3 Electroforesis en Gel de Agarosa
Poros de tamaño mediano. Se utiliza para separar cadenas de ADN doble cadena.Tamaño de 100 pb a 10 Kb ADN total digerido con enzimas de restricción, productos de PCR mayores de 100pb RNA total previo a una transferencia a membrana (Northern Blotting) Utiliza cubas horizontales.

4 ELECTROFORESIS EN GEL DE AGAROSA
Xileno de cianol 5 Kb Azul de bromofenol 0.5 Kb

5 Electroforesis en Gel de Poliacrilamida
Poros de tamaño pequeño. Se utiliza para separar cadenas de ADN simple cadena.Rango de separación 10 pb a 500 pb Permite diferenciar cadenas de ADN simple cadena en 1 pb de diferencia (geles de secuenciamiento) Utiliza cubas verticales

6 ELECTROFORESIS EN GEL DE POLIACRILAMIDA
Acrilamida [CH2=CHCONH2]n Metilen-bis-acrilamida (CH2=CHCONH2)2CH2 En presencia de Persulfato amónico y TEMED (N.N,N’, N’ tetrametiletilendiamina)

7 Enzimas de Restricción
Cuando una bacteria es invadida por un organismo que contiene ADN, por ej por un virus, se puede defender con las enzimas de restricción (ER), denominadas también como endonucleasas. ER reconocen una corta secuencia de ADN en forma especifica y corta ambas hebras. La secuencia de reconocimiento es un palíndrome. ER son bautizadas con el nombre de la bacteria donde se aisló, mas un número de secuencia (por ej. Eco RI).

8 Denominación ER: ej: EcoRI Endonucleasa de Restricción
5’….GAATTC.….3’ ….CTTAAG…. Denominación ER: ej: EcoRI la 1º enzima hallada Escherichia coli Genero Especie R13 Cepa 8

9 La Frecuencia de la presencia de la secuencia hexamérica:
5’….GAATTC.….3’ ….CTTAAG…. La Frecuencia de la presencia de la secuencia hexamérica: 1/4096 (4-6) Al azar 9

10 Digestión del ADN con endonucleasa EcoRI
(Fragmento mayor) (Fragmento más pequeño) Considerar una molécula de ADN linear con 6 copias de GAATTC: habrá7 fragmentos los cuales se podrán separar por tamaño en un gel de electroforesis. 10 Digestión del ADN con endonucleasa EcoRI

11 Las diferentes enzimas reconocen y cortan el ADN genómico en distintas frecuencias
EcoRI reconoce la secuencia hexamérica: 4-6 Sau3A1 reconoce la secuencia tetramérica: 4-4 11

12 Enzimas Restricción Sub-unidades Catalíticas Sub-unidades Reconocimiento

13 Ejemplo: (Eco RI) (corta) 5’ – GAATTC – 3’ 3’ – CTTAAG – 5’

14 Los enzimas de restricción son proteínas homodímericas
y reconocen secuencias de DNA palindrómicas BamHI G ' GATCC SITIO INESPECÍFICO SITIO ESPECÍFICO

15 TIPOS DE CORTE PRODUCIDOS POR E. RESTRICCIÓN
Extremos cohesivos 3’ Extremos romos Extremos cohesivos 5’

16

17 Definiciones Una probe o sonda es un secuencia de oligonucleótidos simple hebra y esta marcado con radio isótopo (32P) o fluorescente. Su secuencia es complementaria a la secuencia de interés, cuya secuencia es conocida. Hibridización: unión por apareamiento de bases de dos moléculas de acido nucleico. Tm: Temperature melting= temperatura a la cual las hebras de un duplex están disociadas en un 50%.

18 Tm ºC = 2(nº A + T) + 4(nº G + C)
Calculo de Tm Tm ºC = 2(nº A + T) + 4(nº G + C) Ejemplo: S- IGFI: AGC CTC GAC AGC CTG CCC CAG G Tm ºC = 2( 4 + 2) + 4( ) Tm ºC = 2(6) + 4(16) Tm ºC = = 76 Tm = 76 ºC

19 DESNATURALIZACIÓN DEL DNA
1. Composición de bases 2. Longitud DNA doble 3. Fuerza iónica

20 Factores que afectan la velocidad de hibridización
Longitud del acido nucleico. Composición de base. Fuerza iónica. Viscosidad. Temperatura Agentes desnaturalizantes. pH

21 Longitud del acido nucleico. Composición de base.
K  longitud Composición de base.  % CG aumenta la re-asociación Fuerza ionica.  Na aumenta la re-asociación Viscosidad Moléculas pequeñas (glicerol, sacarosa): disminuye la velocidad de re-asociación. Polímeros de alto PM (PVP, Dextran, Ficoll): aumenta la velocidad de re-asociación.

22 Agentes desnaturalizantes.
Temperatura A  T°  se rompen las uniones puentes de Hidrogeno. Se define como la t° óptima de hibridización a aquella donde la velocidad de hibridización es máxima. Y es gralmente 25ºC por debajo de la T° de melting. Agentes desnaturalizantes. Formamida: Baja la T° óptima de hibridización de 0,72°C cada 1% pH A una [NaCl] de 0,4M la velocidad de hibridizaciónes independiente del pH (en un rango de 5-9).

23 TIPOS de SECUENCIAS en el ADN GENOMICO
Altamente repetitiva: VNTR, STR Medianamente repetitiva: Secuencias Alu, trasposones (LTR), RNAr, histonas, telomeros. DNA copia única Genes estructura exon-intron. SC Altamente Repetitivo Medianamente Repetitivo Copia Unica DC

24 Genes con estructura exon-intron
GT AG TGA FT Caja GC -90 Caja CAAT -75 -30 TATA 5’ 3’ Enhancer 5’ UTR +1 3’ UTR FTII RNA pol II + Transcripción UGA Señal de clivaje y poliadenilación20-30nt 5’ UTR GU AG GU AG 3’ UTR AAUAAA RNA Transcripto Primario Capping y Poliadenilación NUCLEO UGA CAP 5’ UTR GU AG GU AG 3’ UTR AAAAAAAAA 7-metilguanosina Splicing RNA nuclear pequeño (snRNA) Spliceosoma UGA GU GU CAP 5’ UTR AG AG 3’ UTR AAAAAAAAA GU Lazo o LARIAT AG RNA mensajero MADURO CAP 5’ UTR 3’ UTR AAAAAAAAA CITOPLASMA

25 Polimorfismo genético
LOCUS POLIMORFICO: es una variante muy común que se encuentra en más del 1% de los cromosomas de la población en general. MUTACION Tipos de POLIMORFISMOS: - SNP: Polimorfismos de nucleótido único - Polimorfismos Repetitivos: VNTR, STR, etc. - Polimorfismos de Restricción: RFLP

26 SNP: Polimorfismos de nucleótido único
Los SNP son comunes y ocurren una vez cada 1000 pares bases. Marcarían la susceptibilidad a una enfermedad mas que su causa directa

27 Polimorfismos Repetitivos
VNTR (Variable number of tandem repeat), Ej: [CTGATCTATAGTAC]n STR, (Short tandem repeat), Ej: [ CG ] n Donde n= 20, 50 ó 70 veces

28 RFLP (Restriction Fragment Length Polymorphisms)
Como se puede detectar un RFLP? a) Por técnicas de Southern Blotting Extracción de ADN Digestion con la Enzima de Restricción apropiada Separación de los fragmentos por electroforesis y transferencia a membrana (Southern Blotting) Hibridización con la Sonda o Probe especifica, revelado. Análisis de los resultados

29 RFLPs Condición: La presencia de una mutación es ligada a un polimorfismo de restricción La mutación y el polimorfismo no deben estar separados a una distancia mayor de 106 nucleótidos para que sean coheredados juntos.

30 C B A

31 PCR: PRINCIPIOS

32 Kary Mullis, el inventor de la PCR fue premiado en 1993 con el Premio Nobel en Química

33 Termocicladores para PCR

34 El ciclo de amplificación de PCR
Cada ciclo requiere tres pasos de temperaturas para completar un ronda de la síntesis de ADN.

35 El  perfil de  temperatura de un ciclo de PCR es controlado por el programa del termociclador.
Hay un incremento exponencial del producto de PCR hasta cerca del ciclo nº 30.

36 La Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR)
PCR es una técnica la cual es usada para amplificar un numero de copias de una región especifica del ADN hasta producir una cantidad de ADN que sea adecuadamente testeada. El propósito de la PCR es hacer un alto numero de copias de un gen. Como resultado es posible y caracterizar fragmentos de ADN hallados en una gota de sangre, en una escena de crimen o de un dinosaurio extinguido.

37 Definición PCR es un sistema no celular de clonado del ADN
Es un método de amplificación selectiva de secuencia específicas. A partir de una población heterogénea de moléculas, como puede ser ADN genómico o cDNA. PCR es un proceso de replicación in vitro.

38 Ventajas y Desventajas
Rapidez Sensibilidad Fortaleza DESVENTAJA DE PCR COMO METODO DE CLONADO: Se debe conocer la secuencia Producto generalmente pequeño Infidelidad de la replicación del ADN

39 Nomenclatura Hebras de ADN !
Cadena Codificante, Informativa, sens o cadena (+) Secuencia publicada en Gene Bank! 5’ 3’ 3’ 5’ Cadena Molde, no-codificante, no-informativa, antisentido (anti sens) o cadena (-)

40 Paso 1: Desnaturalización del DNA
Esto ocurre a ºC

41 Paso 2: Annealing o Unión de Primers
Reverse Primer Forward Primer Los cebadores se unen a la secuencia complementaria sobre DNA target.

42 Paso 3: Extensión o “Primer Extension”
5’ 3’ extension 3’ 5’ extension 3’ 5’ DNA polimerasa cataliza la extensión de la hebra en sentido 5’3

43 El nuevo ciclo se inicia por desnaturalización de las nuevas hebras formados en el ciclo previo.

44 Amplificación Exponencial
Ciclos Copias 1 2 4 16 10 1.024 15 32.768 20 25 30

45 Fases en una reacción de PCR
El producto de PCR se acumula en función del número de ciclos. Se distinguen las siguientes fases: La fase exponencial  hasta cerca del ciclo 30 esta bajo las condiciones estándar de reacción. La  fase plateau  resulta de cantidades limitantes de enzima y/o reducción actividad enzimática.

46 Causas de Efecto Plateau
Agotamiento de los sustratos (dNTPs o primers). Estabilidad de los reactivos (dNTPs o enzima) particularmente a la tº de desnaturalización. Inhibición por los productos finales generados (pirofosfato, duplex de DNA).

47 El tamaño del fragmento producido en PCR depende de los primers
Reverse primer Forward primer Tamaño de los fragmentos que son amplificados

48 Elementos de una PCR especifica
Templado Enzima Iniciadores Temperatura de anneling Concentración de Magnesio Concentración de Nucleótidos Condiciones del medio: Buffer, pH, etc. Aditivos: Formamida, DMSO, glicerol, etc. Calidad Concentración Secuencia Concentración, pureza y estabilidad

49 Temperatura de anneling
Temperatura de Annealing: ~ 5oC menos que la Tm de los primers Tm = 4(G + C) + 2(A + T)oC (o usar el Tm provisto por planilla del proveedor)  en la tº anneling resulta en una union no-específica. en la tº annealing resulta en reducción en el rendimiento

50 G:·3 ; A: 11 C:5 ; T: 7 TOTAL= 26 nt Tm= =32+36=68ºC

51 Típica reacción de PCR:
El

52 PCR En un tubo de PCR con una mezcla de DNA genómico, DNA polimerasa, buffer, Mg2+ nucleótidos trifosfatos y primers Termociclador

53 PROCEDIMIENTO…..

54 Tipos de PCR PCR-RFLP ARMS-PCR MAS-PCR PCR- SONDAS ASO (DOT BLOT)
GAP-PCR MUTAGENESIS MEDIADA POR PCR

55 Elementos de Laboratorio

56 TUBOS EPPENDORF 200 l 500 l 1,5ml

57 Pipetas Automáticas P-200 P-1000 P-100 P-10 100-1000 l 20-200 l

58 Termocicladores