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Introducción a la espectroscopía vibracional
Espectro electromagnético Frecuencia (Hz) Longitud de onda Tipo de radiación Tipos de transición m Rayos gamma Nuclear 1 nm - 1 pm Rayos X Electrones internos nm Ultravioleta Electrones externos 4.3x x1014 nm Visible 2.5 µm nm Infrarrojo Vibraciones 1 mm µm Microondas Rotaciones m Radiofrecuencia Inversión de spin
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Estados vibracionales y energía
Frecuencia de la vibración k = constante de fuerza del enlace F = -kx µ = masa reducida, para un sistema diatómico
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Modos normales de vibración (3N - 5)
cm-1 IR RAMAN estiramiento (sim) 1340 - + estiramiento (asim) 2349 deformación 667 O C O C O C O C
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INFRARROJO Reglas de selección:
No todas las vibraciones serán “activas” en IR Sólo aquellas en las que cambie el momento dipolar permanente durante la vibración
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INFRARROJO
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INFRARROJO N-H C-H C=O
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FTIR Espectrometría IR con Transformada de Fourier
Mejor relación señal/ruido ya que la luz no debe pasar por un monocromador. Se miden todas las frecuencias a la vez lo que da mucha mayor rapidez Puede tener una resolución de menos de 0.01 cm-1 Los espectros pasan necesariamente por una computadora lo que facilita el análisis y manejo espectral
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Modos normales de vibración del grupo amida
(valores para metilacetamida) estiramiento NH (3236 F) amida I (1653 F) amida II (1567 F) amida III (1299 M) C N H O amida IV (627 D) amida V (725 F) amida VI (600 M) amida VII (206 M) estiramiento NC (1096 D) estiramiento CN y CC (881 D) deformación CCN (436 D) deformación CNC (289 D)
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ovillo estadístico hélice a transición a b b antiparalela
Susi, H., Timasheff, S and Stevens, L. J Biol Chem (1967) 242,
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Estructura a Estructura b
Goormaghtigh, E; Ruysschaert, J. M. and Raussens, V Biophysical Journal Volume 90 April –2957
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Porcentajes de hélice y cadena extendida obtenidas por rayos X y FTIR
Proteína % Hélice % Cadena extendida FTIR RX Carboxipeptidasa 40 39 33 30 α-Quimotripsina 12 10 50 49 Concanavalina A 4 2 60 Lisozima 41 45 21 19 Papaína 27 29 32 Ribonucleasa A 22 46
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1H2O 2H2O Efecto de la deuteración de la proteína sobre la posición de la banda amida I J. Biol. Chem. (1998) 273:
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BIAP (A) apo BIAP (B) Asignación tentativa 1682 nC=O amida I (hoja b) 1660 nC=O amida I (giro) 1651–1652 1652 nC=O amida I (hélice a) 1633 1586–1577 1586–1571 nC=O COO– Asp o Glu 1547 d N-H amida II 1516–1517 n OH anillo Tyr 1443 1455 d N-2H amida II y 2HOH Asignación tentativa de las diferentes bandas en el espectro FTIR de BIAP y apoBIAP en 2H2O, pH 6.6
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Isótopos y posición de las bandas
FTIR de monóxido de carbono unido a citocromo c aa3 de T. termophilus. Referencia: Pinakoulaki, E.; Soulimane, T. and Varotsis, C. (2002) J. Biol. Chem. 277:32867.
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Efecto Raman Dispersión inelástica de fotones
estados electrónicos virtuales Sir Chandrasekhara Venkata Raman, (சந்திரசேகர வெங்கடராமன்) Tiruchirapalli, Tamil Nadu -7/11/1888 Bangalore, Karnataka - 21/11/1970 Premio Nobel de Física 1930
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Láser, luz monocromática
muestra Láser, luz monocromática Regla de selección: Para que la vibración sea activa en Raman debe provocar un cambio en la polarizabilidad de la molécula. Monocromador, espectrógrafo Ventajas de Raman con respecto a IR Se mide en el visible o el UV donde los detectores son mucho más sensibles El agua produce una dispersión Raman muy débil La resonancia Raman permite sondear grupos asociados a cromóforos con una sensibilidad veces mayor
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N N
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Resonancia Raman Resonancia Raman Raman
estado electrónico excitado estado energético virtual Resonancia Raman Raman estado electrónico basal La resonancia Raman es más intensa que la dispersión Raman, pero necesita que exista un cromóforo y sólo se intensifican las bandas debidas al cromóforo
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Espectro IR de BSA sólida (azul) y espectro Raman de BSA en solución en amortiguador de fosfato (rojo).
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l = nm Das, T. K., S. Mazumdar and S. Mitra (1998). Eur J Biochem 254(3):
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