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Clonación de fragmentos de DNA
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Minipreps Preparación de plásmido por lisis alcalina
Disolución P1 Tris 50 mM pH 8.0 EDTA 10 mM + RNasa 0.1 mg/ml Disolución P2 NaOH 0.2 N SDS 1% Disolución P3 Acetato potásico 3M Áciso acético 11% Birnboin H.C., Doly J. (1979) A rapid alkaline extraction procedure for screening recombinant plasmid DNA. Nucleic acids research 7(6): Birnboin H.C., Doly J. (1979) A rapid alkaline extraction procedure for the isolation of plasmid DNA. Methods in Enzymology 100:
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Endonucleasas de restricción
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Reacción catalizada por la DNA Ligasa
Lehninger. Principios de Bioquímica
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La defosforilación con fosfatasa alcalina evita el religado del vector
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La Fosforilación con polinucleótido quinasa facilita la ligación de fragmentos de DNA
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SÍNTESIS QUÍMICA DE ÁCIDOS NUCLEICOS
Síntesis en fase sólida de una cadena de DNA por el método del triéster fosfito (b-cianoetil) (Dimetoxitritilo) Finalmente se añade NH3 para eliminar los grupos protectores y liberar el oligonucleótido del soporte sólido
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PUNTOS CLAVE DE UNA DNA POLIMERASA
Fidelidad. La mantiene en dos etapas: Sólo forma enlace fosfodiéster si el nucleótido entrante está correctamente empareado con el molde (error 10-4). Si el emparejamiento ha sido incorrecto y aun así se ha formado enlace, lo hidroliza con su actividad 3’ exonucleasa (error final 10-6) Eficiencia catalítica. Depende fundamentalmente de la procesividad (1minuto asociación-reasociación enzima-DNA; 1milisegundo adición de cada nucleótido)
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COMPARACIÓN DE LAS DNA POLIMERASAS I, II Y III DE E. Coli
Lehninger. Principios de Bioquímica
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Secuenciación de DNA Método de Sanger automatizado
Oligo: 5´--C T T A A - Molde: 3´--G A A T T C G C T A A T G C ---5´ - DNA polimerasa - Nucleótidos dATP, dCTP, dGTP, dTTP -Terminadores fluorescentes ddATP, ddCTP, ddGTP, ddTTP Separación de los fragmentos de DNA marcados, mediante electroforesis capilar 5´--C T T A A G -3´ 5´--C T T A A G C -3´ 5´--C T T A A G C G -3´ 5´--C T T A A G C G A -3´ + Detector de fluorescencia 5´--C T T A A G C G A T -3´ láser 5´--C T T A A G C G A T T -3´ G C G A T T A C G 5´--C T T A A G C G A T T A -3´ 5´--C T T A A G C G A T T A C -3´ 5´--C T T A A G C G A T T A C G -3´
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1 tggtcttcagATGTCTGATTCGCTAAATCA 150 accagaagtcTACAGACTAAGCGATTTAGT
31 TCCATCGAGTTCTACGGTGCATGCAGATGA 120 AGGTAGCTCAAGATGCCACGTACGTCTACT 61 TGGATTCGAGCCACCAACATCTCCGGAAGA 90 ACCTAAGCTCGGTGGTTGTAGAGGCCTTCT 91 CAACAACAAAAAACCGTCTTTAGAACAAAT 60 GTTGTTGTTTTTTGGCAGAAATCTTGTTTA 121 TAAACAGGAAAGAGAAGCGTTGTTTACGGg 30 ATTTGTCCTTTCTCTTCGCAACAAATGCCc
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Marcaje de sondas de DNA “Random primer”
5´-CAATGGCGCCCGGTATTCGTAGTTTCTGGCACCGCATTTCGGA-3´ ::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::::: 3´-GTTACCGCGGGCCATAAGCATCAAAGACCGTGGCGTAAAGCCT-5´ DNA polimerasa dATP, dGTP, dTTP, 32P-dCTP Oligonucleótidos aleatorios 5´-CAATGGCGCCCGGTATTCGTAGTTTCTGGCACCGCATTTCGGA-3´ 3´-GTTACCGCGGGCCATAAGCATCAAAGACCGTGGCGTAAAGCCT-5´ 3´-GTTACCGCGGGCCATAAGCATCAAAGACCGTGGCG TAAAGC-5´ 5´-GCGCCC GGTATTCGTAGT 5´-TGGCAC CGCATTTCGGA-3´
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Sistemas de expresión bacterianos
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Sistemas de expresión bacterianos basados en la RNA polimerasa de T7
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Sistemas de expresión bacterianos: precipitación de proteínas recombinantes
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Sistemas de expresión bacterianos: “refolding” de proteínas recombinantes
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Utilización de transcriptasa reversa para obtener cDNA
exones I II III IV V VI VII VIII DNA Transcripción Pre- mRNA Maduración mRNA maduro AAAA Transcripción reversa TTTT cDNA AAAA
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MODIFICACIONES POST-TRADUCCIONALES
Eliminación en la mayoría de los casos de la formilmetionina en procariotas y de la metionina iniciadora en eucariotas en el extremo N-t. Fosforilación de ciertos residuos de Ser, Thr y Tyr en algunas proteínas.
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MODIFICACIONES POST-TRADUCCIONALES
Unión de grupos lipídicos (isoprenilación, palmitoilación, miristoilación)
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MODIFICACIONES POST-TRADUCCIONALES
Glicosilación (adición de glúcidos) de residuos de Asn mediante enlaces N-glicosídicos o de residuos de Ser o Thr mediante enlaces O-glicosídicos. Formación de puentes disulfuro. Modificación proteolítica. Algunas proteínas, como la insulina, la tripsina, la quimotripsina, se sintetizan como precursores inactivos, y han de ser procesadas proteolíticamente para dar sus formas activas, más pequeñas.
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Envío de proteínas al Retículo Endoplásmico
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Sistemas de expresión en células animales
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Introducción de DNA en células animales
Carácter transitorio. El DNA sólo es introducido en parte de las células del cultivo. No se aplica selección. El cultivo se recoge y analiza al cabo de unos pocos días. Carácter estable. El vector debe contener un marcador (p.ej. un gen de resistencia a un antibiótico) que permita seleccionar las células en las que se ha introducido el DNA e integrado en el genoma. Se pueden aislar clones individuales o trabajar con toda la población.
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Introducción de DNA en células animales
Transfección. Polímeros catiónicos (DEAE-Dextrano, Polietilenimina (PEI) Fosfato cálcico Lípidos catiónicos Transducción. Partículas virales. Retrovirus Microinyección Electroporación.
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Introducción de DNA en células animales
Transfección. Polímeros catiónicos (DEAE-Dextrano, Polietilenimina (PEI), FuGENE Fosfato cálcico Lípidos catiónicos (Lipofectamina)
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Introducción de DNA en células animales
Electroporación.
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Introducción de DNA en células animales
Transfección transitoria: éxito parcial
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Introducción de DNA en células animales
Transducción Célula empaquetadora Célula diana
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Introducción de DNA en células animales
Transducción
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Sistemas de expresión inducibles
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Transgénicos inducibles
collagen II tTA doxicyclin Collagenase 3 TRE
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Transgénicos inducibles
collagen II tTA doxicyclin Collagenase-3 TRE
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