Chinestra S. C. 1,2, Deperi S. 1,2, Carmona D. 2, Vincini A. M. 2, Salvalaggio A. 2, Bedogni C. 2, Capezio S. 2, Huarte M. 2 1 CONICET; 2 Unidad Integrada.

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1 Chinestra S. C. 1,2, Deperi S. 1,2, Carmona D. 2, Vincini A. M. 2, Salvalaggio A. 2, Bedogni C. 2, Capezio S. 2, Huarte M. 2 1 CONICET; 2 Unidad Integrada Balcarce, Instituto Nacional Tecnología Agropecuaria-Facultad de Ciencias Agrarias (INTA-FCA-UNMDP). Ruta 226 Km 73.5, CC 276, CP 7600, Balcarce, Buenos Aires, Argentina. E- mail: cchinestra@gmail.com Chinestra S. C. 1,2, Deperi S. 1,2, Carmona D. 2, Vincini A. M. 2, Salvalaggio A. 2, Bedogni C. 2, Capezio S. 2, Huarte M. 2 1 CONICET; 2 Unidad Integrada Balcarce, Instituto Nacional Tecnología Agropecuaria-Facultad de Ciencias Agrarias (INTA-FCA-UNMDP). Ruta 226 Km 73.5, CC 276, CP 7600, Balcarce, Buenos Aires, Argentina. E- mail: cchinestra@gmail.com Materiales y métodos Introducción Resultados Conclusiones Evaluación de la infección con el Virus del Enrollado de la hoja de la Papa (PLRV) en genotipos de papa de la colección de germoplasma de Argentina Evaluación de la infección con el Virus del Enrollado de la hoja de la Papa (PLRV) en genotipos de papa de la colección de germoplasma de Argentina El Virus del Enrollado de la hoja de la Papa (PLRV) es uno de los de mayor importancia económica que afectan al cultivo, por lo que es relevante la identificación de fuentes de resistencia ya sea en papas silvestres o cultivadas (Rodríguez et al., 1990; Syller, 1996; Barker y Waterhause, 1999). El objetivo del trabajo fue evaluar la infección con PLRV en genotipos de papa del Programa de Mejoramiento genético de Papa del INTA- Balcarce. Síntomas asociados a infección primaria con PLRV: Enrollamiento de folíolos en hojas superiores (Fig. 3 y 4), follaje erguido y más claro en hojas apicales (Fig. 5 y 7). El nombre de los genotipos se indica en la imagen. Mosaico en hojas en planta positiva para PLRV, indicando posible co- infección con PVY no evaluada (Fig. 4). Áfido vector Myzus persicae (Fig. 8) Fig. 3. Genotipo 393371.35 Fig. 4. Genotipo 304149.15 Fig. 5. Genotipo 392785.24 Fig. 6. Pampeana Fig. 7. Kárnico La presencia de áfidos a campo permitió la infección natural con PLRV en genotipos de papa. Por otra parte, se confirmó en laboratorio la susceptibilidad al virus en varios genotipos no infectados a campo. Las plantas evaluadas de los genotipos B 90.592.1 y B 90.619.3 resultaron resistentes a PLRV, mientras que las plantas del genotipo 380389.1 no infectadas podrían presentar resistencia al vector. Se deberá evaluar un mayor número de plantas de dichos genotipos y utilizar técnicas de diagnóstico más sensibles para corroborar los resultados. Se evaluó la infección natural con PLRV en 145 genotipos libres de virus del Programa de Mejoramiento genético de Papa del INTA- Balcarce. Los genotipos se plantaron siguiendo un diseño experimental en bloques aumentados, con 8 repeticiones para los testigos (Fig. 1). Trampa de Moerike Evaluación a campo Evaluación en laboratorio Se criaron áfidos de la especie Myzus persicae en plantas de Datura stramonium infectadas con PLRV (Fig. 2). Los testigos Frital INTA, Innovator, Kennebeck, Spunta, Asterix, Bintje, y Newen INTA resultaron infectados. Además se detectaron 34 genotipos infectados, de los cuales 20 presentaron síntomas asociados a infección primaria con PLRV (Figs. 3 a 5). Evaluación a campo Evaluación en laboratorio De los 30 genotipos inoculados con 25 áfidos, 25 resultaron positivos a la infección en al menos una de las plantas evaluadas. De los 5 genotipos negativos, 2 resultaron positivos y 3 negativos según DAS- ELISA cuando se evaluaron con 50 áfidos por planta. Se observaron síntomas primarios asociados a PLRV en uno de los genotipos infectados (Fig. 7). Fig. 1 Fig. 8 Con 50 áfidosCon 25 áfidos Serrana B 90.592.1 B 90.619.3 380389.1 374080.5 B 90.592.1 B 90.619.3 380389.1 En 380389.1 no se encontraron áfidos luego de 10 días de inoculado. Genotipos que resultaron negativos para PLRV según la técnica DAS-ELISA Genotipos que resultaron negativos para PLRV según la técnica DAS-ELISA El diagnóstico de PLRV se realizó por DAS-ELISA. La muestra consistió en folíolos de hojas apicales de 3 a 5 plantas por genotipo, extraídas entre 45 y 60 días después de la plantación. Además, se evaluó la sintomatología en las plantas infectadas. El diagnóstico de PLRV se realizó por DAS-ELISA. La muestra consistió en folíolos de hojas apicales de 1 o 2 plantas por genotipo, extraídas 30 días después de la exposición al áfido. Además, se evaluó la sintomatología en las plantas infectadas. Una muestra de 30 genotipos que no se infectaron a campo se inocularon con 25 áfidos virulíferos. Además, los genotipos que resultaron negativos con 25 áfidos se inocularon con 50 áfidos virulíferos. Fig. 2 Un total de 104 genotipos evaluados a campo resultaron negativos a PLRV. Bibliografía -Rodríguez G; Ochoa C; Salazar L. 1990. Potencial de resistencia a virus en especies silvestres de Solanum. Revista Latinoamericana de la Papa. 3:20-29. -Barker H. y Waterhouse P. M. 1999. The development of resistance to luteoviruses mediated by host genes and pathogen-derived transgenes. En: The Luteoviridae. H. G. Smith and H. Barker, eds. CAB Int., Wallingford, UK. pp 169-210. - Syller J. 1996. Potato leaf roll virus: its transmission and control. Integrated pest management reviews. 1: 271-227.